Воспроизводство крупного рогатого скота

В настоящее время только EPF или ISG15 позволяют вмешательство производителя (то есть введение простагландина) до первого эструса после осеменения. К сожалению, для точного обнаружения этих молекул в материнском периферическом кровообращении, соответственно, необходимы RIT и ПЦР в реальном времени. Оба эти теста требуют дорогостоящего оборудования и их трудно проводить вне лабораторных условий. Таким образом, практичность использования этих соединений для определения беременности крупного рогатого скота в настоящее время ограничена. Производители и ветеринары должны работать вместе, чтобы принимать решения относительно того, какой метод тестирования на стельность использовать, исходя из индивидуальных потребностей каждого хозяйства.

Ссылки

1. Plaizer J, King G, Dekkers J, Lissemore K. Оценка экономической значимости показателей воспроизводства в молочных стадах с помощью компьютерного моделирования. J Dairy Sci 1997;80: 2775–2783.

2. Lucy M, Green J, Poock S. Определение стельности у крупного рогатого скота: обзор доступных альтернативных методов. В кн.: Материалы конференции «Прикладные стратегии воспроизводства мясного крупного рогатого скота», с 31 августа по 1 сентября, 2011 , Джоплин, штат Миссури . http://www.appliedreprostrategies.com/2011/ Joplin/schedule.html

3. Sasser R, Ruder C. Выявление ранней беременности у домашних жвачных животных. J Reprod Fert Suppl 1987;34:261–271.

4. Fricke P. Взгляд в будущее: ультразвуковое исследование как инструмент управления воспроизводством молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2002;85: 1918–1926.

5. Romano J, Thompson J, Forrest D, Westhusin M, Tomaszweski M, Kraemer D. Ранняя диагностика стельности у молочного крупного рогатого скота методом трансректального ультразвукового исследования. Theriogenology 2006;66:1034–1041.

6. Marshall J, Hammond C, Ross G, Jacobson A, Rayford P, Odell W. Хорионический гонадотропин в плазме крови и моче на ранних сроках беременности у человека. Obstet Gynecol 1986;32:760–764.

7. De Vries A. Экономическая ценность стельности у молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2006;89:3876–3885.

8. Ayalon N. Обзор эмбриональной смертности у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1978;54:483–493.

9. Diskin M, Sreenan J. Частота оплодотворения и эмбриональной смертности у тёлок мясных пород после искусственного осеменения. J Reprod Fertil 1980;59:463–468.

10. Humblot P. Использование анализов на специфические белки беременности и прогестерон для мониторинга беременности и определения сроков, частоты и причин эмбриональной смертности у жвачных животных. Theriogenology 2001;56:1417–1433.

11. Комитет по номенклатуре воспроизводства крупного рогатого скота. Рекомендации по стандартизации терминов, относящихся к воспроизводству крупного рогатого скота. Cornell Vet 1972;62:216– 237.

12. Beal W, Perry R, Corah L. Применение ультразвукового исследования для мониторинга физиологии воспроизводства мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1992;70:924–929.

13. Santos JE, Thatcher WW, Chebel RC, Cerri RL, Galvão KN. Влияние частоты гибели эмбрионов у крупного рогатого скота на эффективность программ синхронизации охоты. Anim Reprod Sci 2004;82–83:513–535.

14. Pennington J, Schultz L, Hoffman W. Сравнение результатов диагностики стельности по уровню прогестерона в молоке на 21-й и 24-й день после осеменения: полевое исследование на молочном крупном рогатом скоте. J Dairy Sci 1985;68:2740–2745.

15. Chang C, Estergreen V. Разработка прямого иммуноферментного анализа для определения прогестерона в молоке и его применение для диагностики стельности у коров. Steroids 1983;41:173–195.

16. Laing J, Gibbs H, Eastman S. Диагностика стельности коров в стаде на основе определения уровня прогестерона в молоке. Br Vet J 1976;132:204–209.

17. Romangolo D, Nebel R. Точность иммуноферментного анализа и латекс-агглютинационного теста на прогестерон для подтверждения течки и ранней диагностики стельности у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 1993;39:1121–1128.

18. Van de Wiel D, Koops W. Разработка и валидация иммуноферментного анализа для определения прогестерона в молоке или плазме крови коров. Anim Reprod Sci 1986;10:201–213.

19. Waldman A. Иммуноферментный анализ (EIA) для определения прогестерона в молоке с использованием моноклонального антитела. Anim Reprod Sci 1993;34:19–30.

20. Zaied A, Bierschwal C, Elmore R, Youngquist R, Sharp A, Garverick H. Концентрация прогестерона в молоке как показатель для ранней диагностики стельности у молочных коров. Theriogenology 1979;12:3–11.

21. Sasser R, Crock J, Ruder-Montgomery C. Характеристики специфического для беременности белка B у крупного рогатого скота. J Reprod Fert Suppl 1989;37:109–113.

22. Xie S, Low B, Nagel R и др. Идентификация основных специфических для беременности антигенов крупного рогатого скота и овец как неактивных представителей семейства аспартатных протеиназ. Proc Natl Acad Sci USA 1991;88:10247–10251.

23. Sasser R, Ruder C, Ivani K, Butler J, Hamilton W. Выявление стельности с помощью радиоиммунного анализа нового специфического для беременности белка в сыворотке крови коров и динамика его концентрации в сыворотке в период стельности. Biol Reprod 1986;35:936–942.

24. Howard J, Gabor G, Gray T и др. BioPRYN — анализ крови для контроля воспроизводства и стельности крупного рогатого скота. В: Труды ежегодного собрания Западного отделения Американского общества зоотехнии , т. 58. Шампейн, Иллинойс: Американское общество зоотехнии, 2007, с. 295–298.

25. Sousa N, Ayad A, Beckers J, Gajewski Z. Гликопротеины, ассоциированные с беременностью (PAG), как маркеры беременности у жвачных. J Physiol Pharmacol 2006;57(доп. 8):153–171.

26. Romano J, Larson J. Точность теста на специфический для беременности белок B при ранней диагностике стельности у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2010;74:932–939.

27. Silva E, Sterry R, Kolb D и др. Точность иммуноферментного анализа на гликопротеины, ассоциированные с беременностью, для определения стельности у лактирующих молочных коров через двадцать семь дней после искусственного осеменения в заданные сроки. J Dairy Sci 2007;90:4612–4622.

28. Kiracofe G, Wright J, Schalles R, Ruder C, Parish S, Sasser R. Специфический для беременности белок B в сыворотке крови мясных коров после отёла. J Anim Sci 1993;71:2199–2205.

29. Morton H. Фактор ранней беременности (EPF): связующее звено между оплодотворением и иммуномодуляцией. Aust J Biol Sci 1984;37:393–407.

30. Morton H, Nancarrow C, Scaramuzzi R, Evison B, Clunie G. Выявление ранней беременности у овец с помощью теста ингибирования розеткообразования. J Reprod Fertil 1979;56:75–80.

31. Nancarrow C, Wallace A, Grewal A. Фактор ранней беременности у овец и крупного рогатого скота. J Reprod Fert Suppl 1981;30:191–199.

32. Whisnant C, Pagels L, Daves M. Разбор случая: эффективность коммерческого теста на фактор раннего зачатия при применении у крупного рогатого скота. Prof Anim Sci 2001;17:51–53.

33. Ambrose D, Radke B, Pitney P, Goonewardene L. Оценка иммунохроматографического теста на фактор раннего зачатия для выявления нестельных животных среди молочного крупного рогатого скота. Can Vet J 2007;48:831–835.

34. Cordoba M, Sartori R, Fricke P. Оценка коммерчески доступного теста на фактор раннего зачатия (ECF) для определения стельности у молочного крупного рогатого скота. J Dairy Sci 2001;84:1884–1889.

35. DesCôteaux L, Carrière P, Bigras-Poulin M. Оценка тест-полоски на фактор раннего зачатия (ECF™) у молочных коров в период между 11-м и 15-м днями после осеменения. Bov Pract 2000;34:87–91.

36. Gandy B, Tucker W, Ryan P и др. Оценка теста на фактор раннего зачатия (ECF™) для выявления нестельных животных среди молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2001;56:637–647.

37. Bazer F, Spencer T, Ott, T. Интерферон тау: новый сигнал распознавания беременности. Am J Reprod Immunol 1997;37:412–420.

38. Green J, Okamura C, Poock S, Lucy M. Измерение экспрессии генов, стимулируемых интерфероном тау (IFN-τ), в лейкоцитах крови для диагностики стельности молочного крупного рогатого скота в течение 18–20 дней после осеменения. Anim Reprod Sci 2010;121:24–33.

39. Austin K, Ward S, Teixeira M, Dean V, Moore D, Hansen T. Убиквитин-перекрёстно-реактивный белок выделяется маткой коровы

• в ответ на действие интерферона на ранних сроках стельности. Biol Reprod 1996;54:600–606.

• Austin K, Carr A, Pru J и др. Локализация ISG15 и конъюгированных белков в эндометрии коров с помощью иммуногистохимии и электронной микроскопии. Endocrinology 2004;145:967–975.

• Gifford C, Racicot K, Clark D и др. Регуляция генов, стимулируемых интерфероном, в лейкоцитах периферической крови стельных молочных коров и осеменённых, но не стельных молочных коров. J Dairy Sci 2007;90: 274–280.

• Hansen T, Austin K, Johnson G. Кратковременная экспрессия гена белка, перекрёстно реагирующего с убиквитином, в эндометрии коров. Endocrinology 1997;138:5079–5082.

• Han H, Austin K, Rempel L, Hansen T. Низкие уровни мРНК ISG15 и прогестерона в крови позволяют прогнозировать отсутствие стельности у молочных коров. J Endocrinol 2006;191:505–512.

• Mayer J, Soller J, Beck J и др. Ранняя диагностика стельности у молочных коров по циркулирующим нуклеиновым кислотам. Theriogenology 2013;79:173–179.

• Turin L, Invernizzi P, Woodcock M и др. Фетальный микрохимеризм у коров при обычной стельности и стельности после переноса эмбриона и его значение для применения биотехнологий в скотоводстве. Biotechnol J 2007;2:486–491.

• Lemos D, Takeuchi P, Rios A, Araújo A, Lemos H, Ramos E. ДНК плода коровы в кровотоке матери: применение и значение. Placenta 2011;32:912–913.

• Wang G, Cui Q, Cheng K, Zhang X, Xing G, Wu S. Определение пола плода путём амплификации его ДНК, присутствующей в плазме крови коровы. J Reprod Dev 2010;56:639–642.

• Mayer J, Beck J, Soller J, Wemheuer W, Schutz E, Brenig B. Анализ распределения циркулирующей ДНК у стельных и нестельных молочных коров. Biol Reprod 2013;88:29.

Глава 36

Репродуктивная ультрасонография самок крупного рогатого скота

Jill Colloton

Bovine Services LLC, Эдгар, Висконсин, США

Вступление

Когда O.J. Ginther¹ опубликовал в 1995 году книгу "Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: основы" полевые ветеринары начали использовать ультразвуковую технологию для репродуктивных исследований крупного рогатого скота. С появлением небольших аппаратов, предназначенных для перевозки оператором, его использование стало основным. Было опубликовано много статей и других ресурсов, в которых описывается использование ультразвука для репродуктивных исследований скота.^1–6 Цель этой главы - не повторять эти ресурсы, а расширить их.

Диагностика стельности

Теоретически возможно идентифицировать концепт с помощью ультразвука уже через 21 день после осеменения⁷ , но обычно это не практично в полевых условиях. Один опытный врачультрасонографер проверил свою способность точно диагностировать холостых и стельных коров, начиная с 24 дня после осеменения.⁸ Отрицательная прогностическая ценность (выявление холостых) составила 89% через 24 дня у взрослых коров. Другими словами, 11% коров, диагностированных холостыми, были обнаружены стельными при повторной проверке на 32 день. К 26 дню этот ультрасонограф смог правильно определить 99% холостых коров от обследованных. У телок он смог достичь того же уровня компетентности через 24 дня после осеменения.

Ультрасонограферам крупного рогатого скота рекомендуется провести аналогичный анализ своих навыков, чтобы определить их компетентность на разных этапах после осеменения. Время, необходимое для проведения опыта, и количество повторных проверок, необходимых на различных этапах, также должны быть приняты во внимание. Обратите внимание на большую разницу в количестве жидкости и размере зародыша между 26-м (рисунок 36.1a) и 28-м днями (рисунок 36.1b). Обратите внимание, что 26-дневный эмбрион трудно визуализировать на стенке матки. Напротив, 28дневный эмбрион, имеет длину 1 см и хорошо виден в маточной жидкости. Эмбриональное развитие происходит очень быстро, поэтому ожидание в течение пары дней может улучшить точность и скорость обследования стельности.

Для производителя не имеют значения ранние обследования на стельность, если они не приводят к немедленным управленческим решениям.

Структуры яичников помогают при диагностике беременности. Они могут ускорить исследование, если узнать, присутствует ли желтое тело (ЖТ) и, если да, то с какой стороны. Два желтых тела указывают на вероятность близнецов. Стельность с ЖТ, противоположным эмбриону или плоду, является очень высоким риском потери стельности. Небольшое или некачественное ЖТ может указывать на низкий уровень прогестерона, который может привести к потере беременности. Полость в ЖТ не имеет значения, если только полость не настолько велика, а край лютеиновой ткани настолько мал, что общий объем лютеиновой ткани очень мал. В случаях некачественного или контралатерального желтого тела лечение гонадотропин-рилизинг-гормоном (GnRH) может привести к появлению вспомогательного ЖТ для повышения уровня прогестерона. Исследование структуры яичников обсуждается далее в последующих разделах этой главы.

Производитель должен понимать, что раннее выявление нестельных коров имеет решающее значение для быстрого повторного осеменения этих животных, но при этом стельные коровы, диагностированные до 60го дня, должны быть проверены снова после завершения плацентации (см. Раздел Жизнеспособность эмбриона и плода). Это особенно важно для лактирующих молочных животных из-за более высокого риска поздней эмбриональной и ранней фетальной гибели.

Эмбриональный и фетальный возраст

Ультразвук намного превосходит ручную пальпацию при диагностике стельности до 120 дней. С помощью ультразвука измеряется размер эмбриона или плода, а не размер амниотического мешка или общее количество околоплодной жидкости. Рост эмбриона и плода очень стабилен независимо от температуры окружающей среды или породы, тогда как количество жидкости может варьироваться.

Для определения гестационного возраста эмбриона или плода могут быть использованы два метода. Во-первых, можно проводить прямые измерения эмбриона или структур плода и соотносить их с возрастом, используя диаграмму гестационного возраста.^9,10 Диаметр туловища - это самая широкая часть грудной клетки на уровне пупка. Диаметр черепа - это максимальный диаметр головы от затылка до глаз. Длина головы измеряется от вершины черепа до кончика носа.