-
Kastelic J, Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая морфология жёлтых тел и их центральных полостей. J Am Vet Med Assoc 1990;194:922–928.
-
Wiltbank M, Gümen A, Sartori R. Физиологическая классификация состояний, сопровождающихся отсутствием овуляции, у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:21–52.
-
Braw-Tal R, Pen, S, Roth Z. Кисты яичников у высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2009;72:690–698.
-
Stevenson J. Почему вокруг кист столько шума? Hoard’s Dairyman 2006 (октябрь), с. 682.
-
Bicalho R, Galvão K, Guard C, Santos J. Повышение точности выявления функционального жёлтого тела у молочных коров. Theriogenology 2008;70:199–207.
-
Galvão K, Sá Fihlo M, Santos J. Сокращение интервала между предварительной синхронизацией и началом искусственного осеменения в назначенное время повышает плодовитость молочных коров. J Dairy Sci 2007;90: 4212–4218.
-
Bulman D, Lamming G. Случаи длительной активности жёлтого тела у нестельных молочных коров. Vet Rec 1977;100:550–552.
-
Lamming G, Darwash A. Использование профилей концентрации прогестерона в молоке для характеристики причин сниженной плодовитости у дойных коров. Anim Reprod Sci 1998;52:175–190.
-
Gnemmi G. Яичник коровы. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 55–56.
-
López-Helguera I, López-Gatius F, Garcia-Ispierto I. Влияние состояния половых путей в послеродовой период на последующие
показатели воспроизводства высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2012;77:1334–1342.
-
Durocher J, Morin N, Blondin P. Влияние гормональной стимуляции на фолликулярный ответ и способность ооцитов крупного рогатого скота к развитию в условиях коммерческого предприятия. Theriogenology 2006;65:102–115.
-
Singh J, Dominguez M, Jaiswal R, Adams G. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования ответа на суперовуляционную стимуляцию у крупного рогатого скота. Theriogenology 2004;62:227–243.
-
Stroud B. Пересадка эмбрионов крупного рогатого скота, экстракорпоральное оплодотворение, специальные процедуры и клонирование. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 131–132.
-
Savio J, Boland M, Roche J. Развитие доминантных фолликулов и продолжительность яичниковых циклов у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1990;88:581–591.
-
Kotoyori Y, Yokoo N, Ito K и др. . Трёхмерная ультразвуковая визуализация плода лошади. Theriogenology 2012;77:1480–1486.
-
Ginther O. Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: цветная допплерография . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 2007.
-
Gnemmi G, Lefebvre R. Анатомия и ультрасонография репродуктивных органов быка. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 143–162.
-
Buczinski S (ред.). Ультразвуковое исследование крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2009;25:553–822.
Здоровье мясного стада для оптимального воспроизводства
Терри Дж. Энгелькен и Тайлер М. Долман
Кафедра ветеринарной диагностики и медицины продуктивных животных, Центр ветеринарной медицины им. Ллойда, Колледж ветеринарной медицины, Эймс, Айова, США
Вступление
Эффективность воспроизводства является наиболее важным выходным параметром, влияющим на прибыльность предприятия по производству мясных коров/телят.1 Хотя существует множество причин для снижения репродуктивных показателей и сохранности телят, инфекционные заболевания являются основной причиной и часто играют ключевую роль. Репродуктивное заболевание может проявляться разными способами, в зависимости от патогена. Ранняя эмбриональная смерть, аборт на позднем сроке, «синдром слабых телят» и задержка с оплодотворением - все это распространенные клинические сценарии. Тем не менее, конечный результат заключается в том, что у хозяйства на продажу будут отъемные телята с меньшим весом. Крайне важно, чтобы ветеринарный врач мог понять взаимосвязь этих инфекционных агентов с риском заражения, сроками потери стельности, диагностической информацией о стаде и продуктивностью стада. Только тогда могут быть разработаны комплексные программы иммунизации для всей фермы, которые позволят минимизировать потери, связанные с репродуктивными патогенами.
Использование диагностики
Крайне важно, чтобы при разработке программы охраны здоровья стада использовалась диагностическая информация. Выбор вакцин для использования в программе и графиках работы с коровами каждого производителя зависит от присутствия конкретного патогена в стаде или географического района и от риска интродукции ( внедрения) .2 Важно определить категорию или период репродуктивных потерь, поскольку репродуктивные патогены имеют тенденцию встречаться на определенных стадиях стельности. Классически эти категории были определены как ранняя гестационная, средняя гестационная, поздняя гестационная и перипартуриентная (Таблица 37.1). Определение того, когда происходят гестационные потери, является первым шагом в понимании этиологии этих потерь и представляет собой отправную точку для построения программы вакцинации. Использование диагностических инструментов в случаях аборта может быть очень полезным и может быть очень неприятным из-за диагностических ограничений и сложностей.
В случаях аборта этиологический диагноз выявляется менее чем в 50% случаев.3 Тем не менее, благодаря осознанным усилиям диагностических лабораторий ряд достижений в диагностике улучшил выявление определенных патогенных микроорганизмов.4 Хотя этиологическая диагностика может быть сложной, благодаря ей могут быть выявлены инфекционные агенты, вызывающие аборты. В таблице 37.2 показаны многочисленные патогенные микроорганизмы, которые связаны с абортами у коров, период беременности, на который они обычно влияют, и общие диагностические процедуры, используемые для их выявления.2,5–9 Некоторые патогены считаются распространенными репродуктивными агентами, а некоторые редко идентифицируются. Кроме того, определенные патогены могут быть более распространенными в определенных географических районах.3 Диагностические лаборатории имеют различные возможности по ведению аборта. Для практиков разумно иметь тесные рабочие отношения с лабораторией. Консультации диагноста иногда необходимы для разработки системного подхода к абортам. Соответствующие образцы тканей и биологических жидкостей являются более полезными, чем прочие, и важны комплексные представления.
Адекватная информация, включая историю стада, представленная в диагностическую лабораторию является наиболее важным шагом к точному диагнозу.4 Обследование по поводу аборта может быть дорогостоящим, а иногда и не приносящим прибыли. В наилучших интересах предоставить диагностической лаборатории необходимую информацию, чтобы минимизировать затраты и максимизировать успех диагностики. Даже несмотря на то, что инфекционные агенты составляют большую часть описанной этиологии, практикующие врачи, производители и диагносты должны осознавать, что аборты не ограничиваются инфекционными агентами.9 Неинфекционные причины, такие как окружающая среда, токсины, питание и генетика, тоже должны рассматриваться как возможные источники репродуктивных нарушений.
Серологический отбор может быть использован в диагностических обследованиях при абортах, но результаты всегда следует интерпретировать с осторожностью. Отдельные образцы сыворотки практически не имеют значения при диагностике причин абортов.
Трудно дифференцировать значения титра, основанные на вакцинном и естественном воздействии определенных агентов/ антигенов. Тем не менее, отсутствие титра при абортах может исключить определенные причины. Парные образцы сыворотки также продемонстрировали ограниченную ценность.
Таблица 37.1. Уровень патогенов, связанных с репродуктивными потерями у мясных коров в период беременности.
| Гестационный период | ||||
|---|---|---|---|---|
| Патоген | Ранний | Средний | Поздний | Перипарту- риентный |
| Histophilus somni | Низкий | Высокий | Умеренный | |
| Brucella abortus | Низкий | Высокий | Низкий | |
| Вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (IBR) | НизкийСредний | Высокий | Низкий | |
| Вирус катаральной лихорадки овец | Низкий | Умеренный | Низкий | |
| BVDV | Низкий | Высокий | Низкий | Низкий |
| Серовары лептоспир | Низкий | Высокий | Низкий | |
| Campylobacter fetus подвид venerealis | Высокий | Умеренный | ||
| Tritrichomonas foetus | Высокий | Низкий | ||
| Aspergillus fumigatus | Низкий | |||
| Ureaplasma spp. | Низкий | |||
| Listeria monocytogenes | Низкий | |||
| Chlamydia psittaci | Низкий | |||
| Вирус парагриппа 3 | Низкий | Низкий | ||
| Смешанная бактериальная флора | Низкий | Низкий | ||
Источник : Spire M. Иммунизация мясного стада. Comp Cont Educ Practice Vet 1988; 10: 1111–1117. Используется с разрешения.
Многие из бактериальных и вирусных патогенов, которые вызывают аборт, могут заразить плод или плаценту задолго до того, как произойдет аборт. Этот промежуток времени между инфекцией и абортом может помешать практикующему врачу обнаружить повышающиеся или понижающиеся титры, связанные с начальной инфекцией. Это приводит к отбору двух «выздоравливающих» образцов сыворотки, в которых не удастся обнаружить увеличение титра антител, если оно действительно произошло. Это особенно верно, когда в момент обнаружения аборта отбираются образцы только от пораженных самок. В целом, время сероконверсии зависит от времени воздействия агента и уровня иммунитета, установленного до осеменения и во время беременности. Парные сыворотки гораздо более полезны, когда они используются как часть полного диагностического обследования, которое включает образцы из плаценты, плода и плодных жидкостей.
Серологическое профилирование является одним из вариантов оптимизации использования серологического тестирования. Основой серологического профилирования является анализ титров от пораженных/ абортировавших и незатронутых маток за один и тот же период времени.4 Неясно, сколько образцов необходимо, но некоторые предполагают, что оптимальным будет одинаковое количество пораженных и незатронутых животных, предпочтительно на одной и той же стадии беременности и одного возраста.5 В стадах с хроническими гестационными потерями сыворотка может быть собрана и заморожена у статистически значимого числа коров для дальнейшего тестирования по мере необходимости. Эти замороженные образцы могут быть собраны во время плановых обработок до осеменения и/или во время обследования на стельность. Затем, когда обнаружена потеря плода, законсервированные образцы сыворотки могут быть отправлены вместе с образцами острого и выздоравливающего состояния, чтобы получить более четкую серологическую картину пораженных животных и нормальных когорт. Это должно дать более полную картину того, когда произошла сероконверсия и какие патогенные микроорганизмы были вовлечены.
Таблица 37.2. Агент-связанные аборты, сгруппированные по периоду гестации и диагностическим процедурам.
| Патогены | Гестационный период | Общепринятые диагностические процедуры |
|---|---|---|
| Вирусные | ||
| IBR | От среднего до позднего | FA, IHC, VI |
| BVDV | Средний | FA, IHC, VI, PCR |
| Вирус катаральной лихорадки овец | Поздний | PCR, VI |
| Бактериальные | ||
| Brucella abortus | От среднего до позднего | Бакпосев |
| Leptospira spp. | Поздний | Посев, IHC, PCR |
| Campylobacter fetus subsp. venerealis | Все | Посев, MAT, FA, IHC |
| Ureaplasma spp. | Поздний | Посев, PCR |
| Спорадические/условно-патогенные бактерииa Listeria | Все | Бакпосев |
| Chlamydophila spp. | Поздний | Бакпосев, IHC |
| Протозойные | Поздний | PCR, IHC, FA |
| Tritrichomonas | ||
| Neospora spp. | Ранний | Посев, IHC, окрашивание серебром, H + E, PCR |
| Sarcocystis spp. | От среднего до позднего | IHC, PCR |
| Микотические/грибковые | От среднего до позднего | IHC |
| Aspergillus fumigatus | ||
| Mucor/Candida/Rhizopus spp.b | Все | Микологический посев, H + E |
| Неизвестные агенты | Все | Микологический посев, H + E |
| Эпизоотический / энзоотический бычий | ||
| аборт | Поздний | IHC, окрашивание серебром |
a Arcanobacterium pyogenes, Bacillus spp., Escherichia coli, Mannheimia haemolytica, Streptococcus spp., Pasteurella multocida, Salmonella spp. и др. b Многие роды и виды, связанные с абортами крупного рогатого скота. FA - метод флуоресцентных антител; IHC - иммуногистохимия; VI - выделение вируса; PCR (ПЦР) - полимеразная цепная реакция; H + E - гематоксилин и эозин; МАТ - тест на микроагглютинацию.
