Развиваем сельское хозяйство вместе С заботой о вашем хозяйстве
Товары, услуги и экспертная поддержка — в одном кабинетеУсловия и документы
← База знаний / Воспроизводство КРС

Воспроизводство крупного рогатого скота

Ричард М. Хоппер (редактор) · Год не указан · Зарубежная ·

Перевод оставшихся английских фрагментов выполняется. Часть текста пока на языке оригинала. Историческое издание: сведения приведены по источнику года.

Войти и скачать PDF ↓
  1. Kastelic J, Pierson R, Ginther O. Ультразвуковая морфология жёлтых тел и их центральных полостей. J Am Vet Med Assoc 1990;194:922–928.

  2. Wiltbank M, Gümen A, Sartori R. Физиологическая классификация состояний, сопровождающихся отсутствием овуляции, у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:21–52.

  3. Braw-Tal R, Pen, S, Roth Z. Кисты яичников у высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2009;72:690–698.

  4. Stevenson J. Почему вокруг кист столько шума? Hoard’s Dairyman 2006 (октябрь), с. 682.

  5. Bicalho R, Galvão K, Guard C, Santos J. Повышение точности выявления функционального жёлтого тела у молочных коров. Theriogenology 2008;70:199–207.

  6. Galvão K, Sá Fihlo M, Santos J. Сокращение интервала между предварительной синхронизацией и началом искусственного осеменения в назначенное время повышает плодовитость молочных коров. J Dairy Sci 2007;90: 4212–4218.

  7. Bulman D, Lamming G. Случаи длительной активности жёлтого тела у нестельных молочных коров. Vet Rec 1977;100:550–552.

  8. Lamming G, Darwash A. Использование профилей концентрации прогестерона в молоке для характеристики причин сниженной плодовитости у дойных коров. Anim Reprod Sci 1998;52:175–190.

  9. Gnemmi G. Яичник коровы. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 55–56.

  10. López-Helguera I, López-Gatius F, Garcia-Ispierto I. Влияние состояния половых путей в послеродовой период на последующие

показатели воспроизводства высокопродуктивных молочных коров. Theriogenology 2012;77:1334–1342.

  1. Durocher J, Morin N, Blondin P. Влияние гормональной стимуляции на фолликулярный ответ и способность ооцитов крупного рогатого скота к развитию в условиях коммерческого предприятия. Theriogenology 2006;65:102–115.

  2. Singh J, Dominguez M, Jaiswal R, Adams G. Простой ультразвуковой тест для прогнозирования ответа на суперовуляционную стимуляцию у крупного рогатого скота. Theriogenology 2004;62:227–243.

  3. Stroud B. Пересадка эмбрионов крупного рогатого скота, экстракорпоральное оплодотворение, специальные процедуры и клонирование. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 131–132.

  4. Savio J, Boland M, Roche J. Развитие доминантных фолликулов и продолжительность яичниковых циклов у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1990;88:581–591.

  5. Kotoyori Y, Yokoo N, Ito K и др. . Трёхмерная ультразвуковая визуализация плода лошади. Theriogenology 2012;77:1480–1486.

  6. Ginther O. Ультразвуковая визуализация и репродукция животных: цветная допплерография . Кросс-Плейнс, Висконсин: Equiservices Publishing, 2007.

  7. Gnemmi G, Lefebvre R. Анатомия и ультрасонография репродуктивных органов быка. В кн.: DesCôteaux L, Gnemmi G, Colloton J (ред.) Практический атлас репродуктивной ультрасонографии жвачных и верблюдовых . Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2010, с. 143–162.

  8. Buczinski S (ред.). Ультразвуковое исследование крупного рогатого скота. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2009;25:553–822.

Здоровье мясного стада для оптимального воспроизводства

Терри Дж. Энгелькен и Тайлер М. Долман

Кафедра ветеринарной диагностики и медицины продуктивных животных, Центр ветеринарной медицины им. Ллойда, Колледж ветеринарной медицины, Эймс, Айова, США

Вступление

Эффективность воспроизводства является наиболее важным выходным параметром, влияющим на прибыльность предприятия по производству мясных коров/телят.1 Хотя существует множество причин для снижения репродуктивных показателей и сохранности телят, инфекционные заболевания являются основной причиной и часто играют ключевую роль. Репродуктивное заболевание может проявляться разными способами, в зависимости от патогена. Ранняя эмбриональная смерть, аборт на позднем сроке, «синдром слабых телят» и задержка с оплодотворением - все это распространенные клинические сценарии. Тем не менее, конечный результат заключается в том, что у хозяйства на продажу будут отъемные телята с меньшим весом. Крайне важно, чтобы ветеринарный врач мог понять взаимосвязь этих инфекционных агентов с риском заражения, сроками потери стельности, диагностической информацией о стаде и продуктивностью стада. Только тогда могут быть разработаны комплексные программы иммунизации для всей фермы, которые позволят минимизировать потери, связанные с репродуктивными патогенами.

Использование диагностики

Крайне важно, чтобы при разработке программы охраны здоровья стада использовалась диагностическая информация. Выбор вакцин для использования в программе и графиках работы с коровами каждого производителя зависит от присутствия конкретного патогена в стаде или географического района и от риска интродукции ( внедрения) .2 Важно определить категорию или период репродуктивных потерь, поскольку репродуктивные патогены имеют тенденцию встречаться на определенных стадиях стельности. Классически эти категории были определены как ранняя гестационная, средняя гестационная, поздняя гестационная и перипартуриентная (Таблица 37.1). Определение того, когда происходят гестационные потери, является первым шагом в понимании этиологии этих потерь и представляет собой отправную точку для построения программы вакцинации. Использование диагностических инструментов в случаях аборта может быть очень полезным и может быть очень неприятным из-за диагностических ограничений и сложностей.

В случаях аборта этиологический диагноз выявляется менее чем в 50% случаев.3 Тем не менее, благодаря осознанным усилиям диагностических лабораторий ряд достижений в диагностике улучшил выявление определенных патогенных микроорганизмов.4 Хотя этиологическая диагностика может быть сложной, благодаря ей могут быть выявлены инфекционные агенты, вызывающие аборты. В таблице 37.2 показаны многочисленные патогенные микроорганизмы, которые связаны с абортами у коров, период беременности, на который они обычно влияют, и общие диагностические процедуры, используемые для их выявления.2,5–9 Некоторые патогены считаются распространенными репродуктивными агентами, а некоторые редко идентифицируются. Кроме того, определенные патогены могут быть более распространенными в определенных географических районах.3 Диагностические лаборатории имеют различные возможности по ведению аборта. Для практиков разумно иметь тесные рабочие отношения с лабораторией. Консультации диагноста иногда необходимы для разработки системного подхода к абортам. Соответствующие образцы тканей и биологических жидкостей являются более полезными, чем прочие, и важны комплексные представления.

Адекватная информация, включая историю стада, представленная в диагностическую лабораторию является наиболее важным шагом к точному диагнозу.4 Обследование по поводу аборта может быть дорогостоящим, а иногда и не приносящим прибыли. В наилучших интересах предоставить диагностической лаборатории необходимую информацию, чтобы минимизировать затраты и максимизировать успех диагностики. Даже несмотря на то, что инфекционные агенты составляют большую часть описанной этиологии, практикующие врачи, производители и диагносты должны осознавать, что аборты не ограничиваются инфекционными агентами.9 Неинфекционные причины, такие как окружающая среда, токсины, питание и генетика, тоже должны рассматриваться как возможные источники репродуктивных нарушений.

Серологический отбор может быть использован в диагностических обследованиях при абортах, но результаты всегда следует интерпретировать с осторожностью. Отдельные образцы сыворотки практически не имеют значения при диагностике причин абортов.

Трудно дифференцировать значения титра, основанные на вакцинном и естественном воздействии определенных агентов/ антигенов. Тем не менее, отсутствие титра при абортах может исключить определенные причины. Парные образцы сыворотки также продемонстрировали ограниченную ценность.

Таблица 37.1. Уровень патогенов, связанных с репродуктивными потерями у мясных коров в период беременности.

Гестационный период
ПатогенРаннийСреднийПозднийПерипарту-
риентный
Histophilus somniНизкийВысокийУмеренный
Brucella abortusНизкийВысокийНизкий
Вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (IBR)НизкийСреднийВысокийНизкий
Вирус катаральной лихорадки овецНизкийУмеренныйНизкий
BVDVНизкийВысокийНизкийНизкий
Серовары лептоспирНизкийВысокийНизкий
Campylobacter fetus
подвид venerealis
ВысокийУмеренный
Tritrichomonas foetusВысокийНизкий
Aspergillus fumigatusНизкий
Ureaplasma spp.Низкий
Listeria monocytogenesНизкий
Chlamydia psittaciНизкий
Вирус парагриппа 3НизкийНизкий
Смешанная бактериальная флораНизкийНизкий

Источник : Spire M. Иммунизация мясного стада. Comp Cont Educ Practice Vet 1988; 10: 1111–1117. Используется с разрешения.

Многие из бактериальных и вирусных патогенов, которые вызывают аборт, могут заразить плод или плаценту задолго до того, как произойдет аборт. Этот промежуток времени между инфекцией и абортом может помешать практикующему врачу обнаружить повышающиеся или понижающиеся титры, связанные с начальной инфекцией. Это приводит к отбору двух «выздоравливающих» образцов сыворотки, в которых не удастся обнаружить увеличение титра антител, если оно действительно произошло. Это особенно верно, когда в момент обнаружения аборта отбираются образцы только от пораженных самок. В целом, время сероконверсии зависит от времени воздействия агента и уровня иммунитета, установленного до осеменения и во время беременности. Парные сыворотки гораздо более полезны, когда они используются как часть полного диагностического обследования, которое включает образцы из плаценты, плода и плодных жидкостей.

Серологическое профилирование является одним из вариантов оптимизации использования серологического тестирования. Основой серологического профилирования является анализ титров от пораженных/ абортировавших и незатронутых маток за один и тот же период времени.4 Неясно, сколько образцов необходимо, но некоторые предполагают, что оптимальным будет одинаковое количество пораженных и незатронутых животных, предпочтительно на одной и той же стадии беременности и одного возраста.5 В стадах с хроническими гестационными потерями сыворотка может быть собрана и заморожена у статистически значимого числа коров для дальнейшего тестирования по мере необходимости. Эти замороженные образцы могут быть собраны во время плановых обработок до осеменения и/или во время обследования на стельность. Затем, когда обнаружена потеря плода, законсервированные образцы сыворотки могут быть отправлены вместе с образцами острого и выздоравливающего состояния, чтобы получить более четкую серологическую картину пораженных животных и нормальных когорт. Это должно дать более полную картину того, когда произошла сероконверсия и какие патогенные микроорганизмы были вовлечены.

Таблица 37.2. Агент-связанные аборты, сгруппированные по периоду гестации и диагностическим процедурам.

ПатогеныГестационный периодОбщепринятые диагностические процедуры
Вирусные
IBRОт среднего до позднегоFA, IHC, VI
BVDVСреднийFA, IHC, VI, PCR
Вирус катаральной лихорадки овецПозднийPCR, VI
Бактериальные
Brucella abortusОт среднего до позднегоБакпосев
Leptospira spp.ПозднийПосев, IHC, PCR
Campylobacter fetus subsp. venerealisВсеПосев, MAT, FA, IHC
Ureaplasma spp.ПозднийПосев, PCR
Спорадические/условно-патогенные бактерииa ListeriaВсеБакпосев
Chlamydophila spp.ПозднийБакпосев, IHC
ПротозойныеПозднийPCR, IHC, FA
Tritrichomonas
Neospora spp.РаннийПосев, IHC, окрашивание серебром, H + E, PCR
Sarcocystis spp.От среднего до позднегоIHC, PCR
Микотические/грибковыеОт среднего до позднегоIHC
Aspergillus fumigatus
Mucor/Candida/Rhizopus spp.bВсеМикологический посев, H + E
Неизвестные агентыВсеМикологический посев, H + E
Эпизоотический / энзоотический бычий
абортПозднийIHC, окрашивание серебром

a Arcanobacterium pyogenes, Bacillus spp., Escherichia coli, Mannheimia haemolytica, Streptococcus spp., Pasteurella multocida, Salmonella spp. и др. b Многие роды и виды, связанные с абортами крупного рогатого скота. FA - метод флуоресцентных антител; IHC - иммуногистохимия; VI - выделение вируса; PCR (ПЦР) - полимеразная цепная реакция; H + E - гематоксилин и эозин; МАТ - тест на микроагглютинацию.

Оглавление

Текст, тема и отступы ↑

AgroSota всегда под рукой

Выберите своё приложение AgroSota

Один аккаунт на сайте и в приложении. Light и Full можно установить рядом.

Знакомый сайт в приложении. Для привычной работы с AgroSota.

Версия 1.1.4

Мобильные экраны и кабинеты клиента и агента.

Версия 1.2.7 · Тестовая

Для Android 10 и новее · Нужен интернет

Установка и обновления
  1. Скачайте выбранное приложение.
  2. Откройте APK в папке «Загрузки» и следуйте инструкциям Android.
  3. Войдите под своей учётной записью AgroSota.

Light обновляет прежнее приложение AgroSota. Оно проверяет обновления автоматически, скачивание и установка — с вашим подтверждением.

Full устанавливается отдельно. Это тестовая версия: проверка всех сценариев продолжается.

Для iPhone: откройте agrosota.ru в Safari → «Поделиться» → «На экран Домой».

ИИ-помощник AgroSotaПодбор товаров · связь с менеджером
Отвечает ИИ. Текст сообщений обрабатывается OpenAI. Контакты для звонка укажите в форме ниже.
Передать запрос менеджеру