Воспроизводство крупного рогатого скота

Коров с более тяжелым поражением, имеющих дегидратацию и дисбаланс электролитов, можно попытаться лечить, но прогноз для их жизни плохой. Когда вздутие живота является серьезным, первым шагом в лечении следует рассматривать дренаж жидкости путем абдоминальной катетеризации. В течение нескольких дней потребуются большие объемы внутривенных жидкостей для поддержания гидратации. Индукция аборта лютеолитической дозой простагландина в сочетании с 25 мг дексаметазона обычно приводит к частичному расширению шейки матки и сопровождается выходом околоплодных вод через 30 часов после обработки. Роды обычно ненормальные, с неполным раскрытием шейки матки, первичной инерцией матки и отсутствием сильного давления в брюшной полости. Однако, поскольку плод, как правило, маленький, а в большинстве случаев развит на 7–9 месяцев гестации, извлечение плода путем репозиции ( исправление не правильного положения, позиции и членорасположения плода) и экстракции ( вытягивания) обычно является успешным. Послеродовой метрит является распространенным осложнением и часто приводит к смерти. Прогноз при кесаревом сечении одинаково неблагоприятен, потому что матка атонична и рыхлая, а задержание плодных оболочек происходит почти всегда.⁶²

Мацерация и мумификация плода

Мумификация или мацерация плода происходит, когда плод умирает без сопутствующего лютеолиза и адекватного расширения шейки матки, чтобы сделать возможным его изгнание. Зачастую присутствует функциональное ЖТ, и поэтому первым этапом лечения является введение лютеолитической дозы простагландина. Изгнание плода обычно начинается через 2–4 дня после обработки. Повторная инъекция обычно не требуется. Для этой цели также использовались эстрогены; 50–80 мг диэтилстилбестрола или 5–10 мг эстрадиола внутримышечно обычно приводят к изгнанию плода через 24–72 часа. Может потребоваться повторная обработка и в редких случаях требуется три или четыре инъекции с интервалом в 48 часов.⁶² Независимо от того, используются ли простагландины или эстрогены, изгнание плода может быть неполным из-за недостаточного раскрытия шейки матки и сухости шейки матки и родовых путей. Для изъятия плода часто необходима смазка и мануальная помощь, и может потребоваться ветеринарная помощь после родоразрешения.

Ссылки

1. Liggins G. Преждевременные роды после введения кортикотропина или кортизола плодам ягнят. J Endocrinol 1968;42:323–329.

2. Liggins G. Преждевременное рождение ягнят после введения глюкокортикоидов плодам. J Endocrinol 1968;45:515–523. Wood C. Развитие функции коры надпочечников. В кн.: Meisami E, Timiras PS (ред.) Справочник по росту и биологии развития человека, т. II, часть A. Бока-Ратон: CRC Press, 1989, с. 81–94.

3. Robertson H. Последовательные изменения уровня прогестерона в плазме крови коровы в течение полового цикла, беременности, при родах и после родов. Can J Anim Sci 1972;52:645–658.

4. Wilden S, Day M. Выработка прогестерона плацентой у коров мясных пород на средних и поздних сроках беременности. Отчёт об исследованиях мясного крупного рогатого скота, Центр сельскохозяйственных исследований и разработок Огайо, 1991, № 912, с. 73–83.

5. Reimers T, Ulman M, Hansel W. Выработка прогестерона и простаноидов двуядерными клетками трофобласта крупного рогатого скота. Biol Reprod 1985;33:1227–1236.

6. Pimmentel S, Pimentel M, Weston P, Hixon J, Wagner W. Секреция прогестерона фетоплацентарным комплексом коровы и реакция жёлтых тел на стимулы стероидогенеза на двух стадиях беременности. Am J Vet Res 1986;47:1967–1971.

7. Johnson W, Manns J, Adams W, Mapletoft R. Прерывание беременности клопростенолом и дексаметазоном у коров с сохранёнными или удалёнными яичниками. Can Vet J 1981;22:288–290.

8. Hunter J, Fairclough R, Peterson A, Welch R. Гормональные изменения у плода и матери, предшествующие нормальным родам у коров. Acta Endocrinol 1977;84:653–662.

9. Anderson A, Flint A, Turnbull A. Механизм действия глюкокортикоидов при индукции родов у овец: влияние на метаболизм стероидов в плаценте. J Endocrinol 1975;66:61–70.

10. Ou C, Orsino A, Lye S. Экспрессия коннексина43 и коннексина26 в миометрии крыс во время беременности и родов по-разному регулируется механическими и гормональными сигналами. Endocrinology 1997;138:5398–5407.

11. Murata T, Murata E, Liu X, Narita K, Honda K, Higuchi T. Экспрессия гена рецептора окситоцина в матке крысы: регуляция стероидами яичников. J Endocrinol 2000;166:45–52.

12. Lindell J, Kindahl H, Edqvist L. Ранние аборты у крупного рогатого скота, вызванные простагландином. Клинические исходы и эндогенное высвобождение простагландина F2-альфа и прогестерона. Anim Reprod Sci 1981;3:289–299.

13. McLaren W, Young I, Rice G. Локализация и изменения во времени содержания простагландин-G/H-синтетазы1 и 2 во внутриутробных тканях овец в связи с родами, вызванными глюкокортикоидами, и самопроизвольными родами. J Endocrinol 2000;165:399–410.

14. Liggins G. Эндокринология родов. В кн.: Novy MJ, Resko JA (ред.) Эндокринология плода . Нью-Йорк: Academic Press, 1981, с. 211–237.

15. Wood C. Регуляция родов у жвачных животных. J Reprod Fertil Suppl 1999;54:115–126.

16. Saoud C, Wood C. Влияние андростендиона и 17β-эстрадиола на секрецию адренокортикотропина у плода овцы. Am J Physiol 1997;272:R1128–R1134.

17. Welch R, Newling P, Anderson D. Индукция родов у крупного рогатого скота кортикостероидами: анализ полевых испытаний. NZ Vet J 1973;21:103–108.

18. Welch R, Day A, Duganzich D, Featherstone P. Индуцированный отёл: сравнение схем лечения. NZ Vet J 1979;27:190–194.

19. Wagner W, Willham R, Evans L. Управляемые роды у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1974;38:485–489.

20. Muller L, Beardsley G, Ellis R, Reed D, Owens M. Реакция телят на индукцию родов у молочных коров дексаметазоном или дексаметазоном в сочетании с бензоатом эстрадиола. J Anim Sci 1975;41:1711–1716.

21. Diskin M, Sreenan J. Индукция родов у коров: применение кортикостероида короткого действия отдельно или через пять дней после инъекции кортикостероида длительного действия. Irish Vet J 1984;38:6–13.

22. MacDiarmid S. Индукция родов у крупного рогатого скота с помощью кортикостероидов: обзор. Часть 1. Причины индукции, механизмы индукции и применяемые препараты. Animal Breeding Abstracts 1983;51:403–419.

23. MacDiarmid S. Индукция родов у крупного рогатого скота с помощью кортикостероидов: обзор. Часть 2. Влияние индуцированного отёла на телёнка и корову. Animal Breeding Abstracts 1983;51:499–508.

24. Wagner W. Индукция родов у крупного рогатого скота. В кн.: Morrow DA (ред.) Современные методы лечения в териогенологии . Филадельфия: WB Saunders, 1980, с. 236–238.

25. O’Farell K, Crowley J. Некоторые наблюдения за применением двух кортикостероидных препаратов для индукции преждевременного отёла. Vet Rec 1974;94:364–366.

26. Barth A, Adams W, Manns J, Rawlings N. Индукция родов у мясного крупного рогатого скота с помощью эстрогенов в сочетании с дексаметазоном. Can Vet J 1978;19:175–180.

27. Beardsley G, Muller L, Owens M, Ludens F, Tucker W. Индукция родов у молочных коров дексаметазоном. I. Реакция коров и показатели их продуктивности. J Dairy Sci 1974;57:1061–1066.

28. Bo G, Fernandez M, Barth A, Mapletoft R. Снижение частоты задержания последа при индукции родов у коров. Theriogenology 1992;38:45–61.

1. Nasser L, Bo G, Barth A, Mapletoft R. Индукция родов у крупного рогатого скота: влияние предварительного введения триамцинолона на частоту задержания последа. Can Vet J 1994;35:491–496.

2. Hoerlein A, Jones D. Иммуноглобулины у крупного рогатого скота после индуцированных родов. J Am Vet Med Assoc 1977;170:325–326.

3. Field R, Bretzlaff K, Elmore R, Rupp G. Влияние индукции родов на содержание иммуноглобулинов в молозиве и сыворотке крови телят. Theriogenology 1989;32:501–506.

4. Husband A, Brandon M, Lascelles A. Всасывание и эндогенная выработка иммуноглобулинов у телят. Aust J Exp Biol Med Sci 1973;51:707–721.

5. Bailey L, McLennan M, McLean D, Harford P, Munro G. Применение триметилацетата дексаметазона для ускорения наступления родов у молочных коров. Aust Vet J 1973;19:175–179.

6. Davis K, Macmillan K. Управляемый отёл путём индукции родов на 274-й день беременности у молочных коров. Proc NZ Soc Anim Prod 2001;61:184–186.

7. Lavoie V, Moody E. Предварительное введение эстрогена при индукции родов у крупного рогатого скота кортикостероидами. J Anim Sci 1973;37:770–774.

8. Grunert E, Ahlers D, Jockle W. Влияние высокой дозы диэтилстильбэстрола на отделение последа после индукции родов у крупного рогатого скота кортикостероидами. Theriogenology 1975;3:249–258.

9. Kordts E, Joechle W. Индукция родов у молочного крупного рогатого скота: сравнение кортикостероида (флуметазона) и простагландина (PGF2α) в разных возрастных группах. Theriogenology 1975;3:171–178.

10. Brand A, Debois C, Kommery R, Dejong M. Индукция аборта у крупного рогатого скота с помощью простагландина F2α и валерата эстрадиола. Tijdschr Diergeneeskd 1975;100:432–435.

11. Beardsley G, Muller L, Garverick H, Ludens F, Tucker W. Индукция родов у молочных коров дексаметазоном. II. Реакция на дексаметазон в сочетании с бензоатом эстрадиола. J Dairy Sci 1976;59:241–247.

12. Vesnick Z, Holub A, Zraly Z и др.Регуляция родовой деятельности у коров с помощью карбааналога окситоцина длительного действия: предварительное сообщение. Am J Vet Res 1979;40:425–429.

13. Morrison D, Humes P, Godke R. Применение дименгидрината в сочетании с дексаметазоном для индукции родов у мясного крупного рогатого скота. Theriogenology 1983;19:221–233.

14. Musah A, Schwabe C, Willham R, Anderson L. Индукция родов, секреция прогестерона и отделение плаценты у тёлок мясных пород при введении релаксина с клопростенолом или дексаметазоном. Biol Reprod 1978;39:797–803.

15. Li YF, Perezgrovas R, Gazal OS, Schwabe C, Anderson LL. Антипрогестин RU 486 облегчает роды у крупного рогатого скота. Endocrinology 1991;129:765–770.

16. Day A. Применение клопростенола для прерывания беременности у крупного рогатого скота. А) Индукция родов. NZ Vet J 1977;25:136–139.

17. Henricks D, Rawlings N, Ellicott A, Dickey J, Hill J. Применение простагландина F2α для индукции родов у тёлок мясных пород. J Anim Sci 1977;44:438–441.

18. Chew B, Erb R, Randel R, Rouquette F Jr. Влияние индукции родов кортикостероидами на лактацию и дородовую динамику концентраций прогестерона и эстрогенов в сыворотке крови у коров с задержанием плодных оболочек и без него. Theriogenology 1978;10:13–25.

19. Day A. Применение клопростенола для прерывания беременности у крупного рогатого скота. Б) Индукция аборта. NZ Vet J 1977;25:139–144.

20. Dawson F. Методы прерывания беременности на ранних сроках у коров. Vet Rec 1974;94:542–548.

21. Lauderdale J. Влияние PGF2A на беременность и половые циклы у крупного рогатого скота. J Anim Sci 1972;35:246.

22. Miller P. Методы прерывания беременности на ранних сроках у коров. Vet Rec 1974;94:626.

23. Copeland D, Schultz R, Kemptrup M. Индукция аборта у тёлок на откорме с помощью клопростенола (синтетического аналога простагландина F2A): исследование зависимости эффекта от дозы. Can Vet J 1978;19:29–32.

24. Parmigiani E, Ball L, Lefever D, Rupp G, Seidel G Jr. Плановое прерывание беременности у крупного рогатого скота путём ручного вызывания аборта. Theriogenology 1978;10:283–290.

25. Barth A, Adams W, Manns J, Kennedy K, Sydenham R, Mapletoft R. Индукция аборта у тёлок на откорме с помощью комбинации клопростенола и дексаметазона. Can Vet J 198;22:62–64.

26. Wehrman M, Kojima F, Sanchez T, Mariscal D, Kinder J. Частота преждевременного полового созревания у растущих тёлок мясных пород. J Anim Sci 1996;74:2462–2467.

27. Fernandes C, Viana J, Ferreira A, Sa W. Фертильность тёлок после аборта, индуцированного клопростенолом. Arq Bras Med Vet Zootec 2002;54:279–282.

28. MacGregor S, Falkner T. Ведение стельных тёлок на откормочной площадке. Comp Cont Educ Pract Vet 1977;19:1389–1391.

29. Edwards A, Laudert S. Экономическая оценка применения средств для прерывания беременности на откормочных площадках. Bov Pract 1984;19:148–150.

30. Coulson A. Прерывание беременности на ранних сроках у крупного рогатого скота с помощью динопроста. Vet Rec 1979;105:553–554.

31. Horstman L, Callahan C, Morter R, Amstutz H. Овариэктомия как способ прерывания беременности и контроля половой охоты у тёлок на откорме. Theriogenology 1982;17:273–292.

32. Roberts S. В кн.: Ветеринарное акушерство и заболевания половых органов (териогенология) , 3-е изд. Вудсток, штат Вермонт: издано автором, 1986, с. 216–220.

33. Lewing F, Proulx J, Mapletoft R. Индукция родов у коров с помощью клопростенола в сочетании с дексаметазоном. Can Vet J 1985;26:317–322.

Менеджмент в профилактике дистоции

W. Mark Hilton и Danielle Glynn

Колледж ветеринарной медицины, Университет Пердью, Западный Лафайет, Индиана, США

Вступление

Дистоция, определяемая как тяжелый отел, является важной экономической проблемой в отрасли мясного скотоводства. Последствия дистоции включают увеличение заболеваемости и смертности телят, повышение заболеваемости и смертности коров, ухудшение здоровья животных, снижение последующей фертильности у коров и увеличение трудозатрат. Если уровень дистоции превышает целевой показатель по стаду, реализация плана по снижению этого уровня должна уменьшить количество проблем, перечисленных выше, что улучшит общее состояние здоровья, благосостояние и прибыльность стада.

Основное внимание в профилактике дистоции направлено в первую очередь на первотелок, а наиболее распространенной причиной дистоции у нетелей является крупноплодие. Уровень сложности отела значительно ниже у зрелых коров по сравнению с нетелями. В таблице 45.1 приведены результаты исследования, проведенного в 1978 году в Монтане, где не было никакого селекционного давления для формирования легкости отела. Приведена частота возникновения дистоции среди самок по возрасту.¹ В другом исследовании 386- ти отелов среди нетелей и 1805- ти среди коров с несколькими отелами уровень дистоции составлял 17% и 4% соответственно.² Это подтверждает предыдущее исследование, что показывает значимость возраста самки в отношении дистоции, но с гораздо более низким общим уровнем дистоции.

Генетика

Вес при рождении является высоконаследуемым признаком, имеющим большую вариативность между породами, чем внутри пород, согласно исследованию 4639 телят и 290 производителей 14 пород Bos taurus.³ Это исследование, проведенное в Центре исследований мясных животных США (MARC) в штате Небраска, которое было завершено в 1976 году, продемонстрировало, что некоторые породы, как правило, производят телят с более низкой массой тела при рождении, чем другие породы.³ Ежегодно Федерация усовершенствования мясного скота (BIF) публикует сводку о многочисленных производственных характеристиках наиболее распространенных пород мясного скота в Соединенных Штатах. Таблица 45.2 повторяет вывод из более раннего исследования и демонстрирует, что некоторые породы имеют тенденцию давать телят с меньшим весом при рождении по сравнению с другими породами.

Несмотря на то, что исследование показало наличие бо'льших различий между породами в среднем весе при рождении, этот показатель внутри пород тоже может значительно различаться. То, что бык принадлежит к породе, которая обычно производит телят с более низким весом при рождении, не означает, что каждый бык в этой породе будет делать то же самое.

Использование показателя прогнозируемой разницы потомства (EPD) в мясной промышленности позволило разработать научно обоснованный путь к улучшению признаков, для которых доступен EPD. Быки с EPD веса при рождении значительно ниже среднего по породе, которые относятся к породам, производящим телят с более низким весом при рождении, были отобраны для скрещивания с телками, и это привело к довольно успешному снижению уровня дистоции в мясном стаде. EPD веса при рождении является показателем легкости отела, и до тех пор, пока не были разработаны более новые EPD для облегчения отела, отбор быков с EPD с низким весом при рождении был основным инструментом отбора для закрепления легкости отела.

Телята от двухлетних маток, у которых были тяжелые роды, были значительно тяжелее при рождении (39,6 против 35,4 кг) и имели значительно более низкую выживаемость через 72 часа (87,1% против 92,9%) и при отъеме (77,4% против 85,1%), чем телята от двухлетних маток, у которых не было трудных родов.⁴ Два исследования, в которых изучалась корреляция между массой тела при рождении и дистоцией, показали, что увеличение массы тела при рождении на каждый килограмм приводило к увеличению количества отелов, требующих родовспоможения на 1,6–4,2%.^4,5 Смертность также увеличивалась среди телят, которые при рождении были значительно легче средних значений, поэтому выбор крайне низкого веса при рождении, повидимому, не является надежной практикой.⁶

BIF ежегодно публикует таблицу EPD для некроссбредных пород (AB), и данные получают по телятам, родившимся в MARC в штате Небраска. Порода Ангус используется в качестве «базы» и ей присваивается нулевое значение при каждой корректировке EPD. AB EPD позволяет напрямую сравнить две разные породы, основываясь на едином базисе EPD. Например, чтобы сравнить быка породы Герефорд с быком породы Ангус по EPD веса при рождении, первым шагом станет определение поправочного коэффициента для быка Герефорда.