Воспроизводство крупного рогатого скота

Таблица 52.3 Оплодотворяемость по схеме Овсинх/ИО по времени у анэстральных и циклирующих молочных коров, с или без введения интравагинального устройства с прогестероном (IVPD) в течение первых 7 дней протокола.

a,b - данные без общего верхнего индекса в строке рознятся(P <0,05). n/a - не применимо; циклирующие коровы не получали IVPD в этом исследовании.

Таблица 52.4 Реакции яичников на лечение ГнРГ, основанные на УЗИ, и процент стельных по схеме Овсинх среди коров с кистозными фолликулами яичников в двух исследованиях.

a Некоторые из меньших кистозных фолликулов (диапазон диаметра 25–30 мм) овулировали. b Только 17 коров были доступны для диагностики стельности.

Лошадиный хорионический гонадотропин

Новые данные^105,106 показали, что включение ЛХГ в протокол на основе прогестерона при лечении анэстральных коров является эффективным. У анэстральных коров, обработанных ГнРГ с введением на 6-7 дней внутривлагалищного устройства с прогестероном, которое извлекали при инъекции ПГФ2α и вводили еще 400 МЕ ЛХГ, оплодотворяемость по 1-му осеменению увеличилась на 5,4 процентов.¹⁰⁵ Необходимы дополнительные исследования, чтобы подтвердить эти выводы.

Пост-осеменительные процедуры

Из-за более высокого риска потери стельности у анэстральных молочных коров были предприняты попытки вмешательства после осеменения, направленные на повышение концентрации прогестерона на ранних стадиях эмбрионального развития. Введение PRID в течение 7 дней, начиная с 4,5 дня после ИО, у анэстральных молочных коров значительно сократило эмбриональные потери (5,6% против 33,3%) по сравнению с анэстральными коровами, которые не получали PRID после ИО,⁹⁹ хотя разница только имела тенденцию быть существенной (P = 0,10).

В другом исследовании, введение ГнРГ через 5 дней после синхронизированного ИО, увеличило оплодотворяемость у анэстральных молочных коров (45,5 против 31,1%) по сравнению с циклическими коровами.¹⁰⁷

Подытог

Лежащие в основе послеродового анэструса у молочного скота причины часто бывают многофакторными, но основным фактором является отрицательный энергетический баланс. Чтобы максимизировать эффективность воспроизводства, коров, которые считаются подверженными более высокому риску анэструса, следует выявить на ранних стадиях и принимать меры для увеличения потребления ими сухого вещества. Оценка состояния яичников с помощью ультрасонографии представляет большую диагностическую ценность. Повышение эффективности выявления охоты значительно уменьшит уровень анэструса из-за сокращения пропусков животных в охоте. Если в качестве меры управления анэструсом выбрано терапевтическое вмешательство, наилучшим вариантом является протокол Овсинх с прогестероном или протокол предварительной синхронизации на основе прогестерона, за которым следует Овсинх/ ИО по времени. Лечение анэстральных коров экономически более эффективно, чем отсутствие лечения.

Ссылки

1. Thatcher W, Wilcox C. Послеродовая течка как показатель репродуктивного состояния молочной коровы. J Dairy Sci 1973;56:608–610.

2. Kawashima C, Kaneko E, Amaya Montoya C и др. Связь первой овуляции в течение трёх недель после отёла с последующими овариальными циклами и фертильностью высокопродуктивных молочных коров. J Reprod Dev 2006;52:479–486.

3. Gautam G, Nakao T, Yamad K, Yoshida C. Определение задержки возобновления активности яичников после отёла и её влияния на последующие показатели воспроизводства у коров голштинской породы. Theriogenology 2010;73:180–189.

4. Kim I, Jeong J, Kang H. Полевое исследование связи формирования жёлтого тела в послеродовые недели 3–5 с последующими показателями воспроизводства молочных коров. J Reprod Dev 2012;58:552–556.

5. Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие после отёла у мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1990;68:799–816.

6. Hammond J. Физиология размножения коровы. University Press, Кембридж, 1927. Цит. по: Short R, Bellows R, Staigmiller R, Berardinelli J, Custer E. Физиологические механизмы, определяющие анэструс и бесплодие после отёла у мясного крупного рогатого скота. J Anim Sci 1990;68:799–816.

7. Hansen P. Сезонная регуляция полового созревания и послеродового анэструса у крупного рогатого скота: обзор. Livestock Prod Sci 1985;12:309–327.

8. Opsomer G, Mijten P, Coryn M, de Kruif A. Послеродовой анэструс у молочных коров: обзор. Vet Quart 1996;18:68–75.

9. Mihm M. Задержка возобновления половой цикличности после отёла у молочных и мясных коров. Reprod Domest Anim 1999;34:277–284.

10. Mwaanga E, Janowski T. Анэструс у молочных коров: причины, распространённость и клинические формы. Reprod Domest Anim 2000;35:193–200.

11. Butler W. Связь энергетического баланса с развитием фолликулов, овуляцией и фертильностью у молочных коров после отёла. Livestock Prod Sci 2003;83:211–218.

12. Crowe M. Возобновление овариальной цикличности после отёла у мясных и молочных коров. Reprod Domest Anim 2008;43(доп. 5):20–28.

13. Peter A, Vos P, Ambrose D. Послеродовой анэструс у молочного крупного рогатого скота. Theriogenology 2009;71:1333–1342.

1. Macmillan K, Lean I, Westwood C. Влияние лактации на фертильность молочных коров. Aust Vet J 1996;73:141–147.

2. Royal M, Darwash A, Flint A, Webb R, Woolliams J, Lamming G. Снижение фертильности молочного скота: изменения традиционных и эндокринных показателей фертильности. Anim Sci 2000;70:487–501.

3. Lucy M. Репродуктивные потери у высокопродуктивного молочного скота: где предел? J Dairy Sci 2001;84:1277–1293.

4. Westwood C, Lean J, Garvin J. Факторы, влияющие на фертильность голштинских коров: многомерный анализ. J Dairy Sci 2002;85:3225–3237.

5. López-Gatius F. Снижается ли фертильность молочного скота? Ретроспективное исследование на северо-востоке Испании. Theriogenology 2003;60:89–99.

6. Ahlman T, Berglund B, Rydhmer L, Strandberg E. Причины выбраковки в органических и традиционных молочных стадах и взаимодействие генотипа со средой в отношении продолжительности продуктивной жизни. J Dairy Sci 2011;94:1568–1575.

7. CanWest DHI. 2011 Отчёт об улучшении стад в западном регионе. CanWest DHI 2012, с. 30.

8. Национальная система мониторинга здоровья животных. Молочное скотоводство 2007. Часть I. Справочные данные о состоянии здоровья молочного скота и методах управления стадом в Соединённых Штатах, 2007 . Форт-Коллинз, Колорадо: USDA, 2007.

9. Rajala-Schultz P, Gröhn Y. Выбраковка молочных коров. Часть II. Влияние заболеваний и репродуктивных показателей на выбраковку коров айрширской породы в Финляндии. Prev Vet Med 1999;41:279–294.

10. Francos G, Mayer E. Анализ показателей фертильности коров с длительным послеродовым анэструсом и другими репродуктивными нарушениями в сравнении с коровами без таких нарушений. Theriogenology 1988;29:399–412.

11. Darwash A, Lamming G, Woolliams J. Фенотипическая связь между сроком наступления послеродовой овуляции и традиционными показателями фертильности молочного скота. Anim Reprod Sci 1997;65:9–16.

12. Stevenson J, Pursley J, Garverick H и др. . Применение прогестерона в ходе протокола Ovsynch у лактирующих молочных коров с циклической активностью яичников и без неё. J Dairy Sci 2006;89:2567–2578.

13. Ambrose D, Kastelic J, Corbett R и др. . Снижение потерь беременности у лактирующих молочных коров при кормлении рационом, обогащённым α-линоленовой кислотой. J Dairy Sci 2006;89:3066–3079.

14. Walsh R, Kelton D, Duffield T, Leslie K, Walton J, LeBlanc S. Распространённость и факторы риска послеродовой ановуляции у молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:315–324.

15. Ambrose D, Colazo M. Репродуктивное состояние молочных стад в Альберте: более подробный анализ. В: Достижения в технологии молочного производства: материалы Западноканадского семинара по молочному скотоводству , 2007, с. 227–244. Доступно по адресу http://www.wcds.ca/proc/2007/Manuscripts/Divakar.pdf

16. Nett T. Функция гипоталамо-гипофизарной системы в послеродовой период у овец и коров. J Reprod Fertil Suppl 1987;34:201–213.

17. Crowe M, Padmanabhan V, Mihm M, Beitins Z, Roche F. Возобновление волн роста фолликулов у мясных коров не связано с перипартальными изменениями неоднородности фолликулостимулирующего гормона, несмотря на значительные изменения концентраций стероидов и лютеинизирующего гормона. Biol Reprod 1998;58:1445–1450.

18. Mann G, Lamming G. Связь между эндокринным состоянием материнского организма, ранним развитием эмбриона и подавлением механизма лютеолиза у коров. Reproduction 2001;121:175–180.

19. Patel O, Takenouchi N, Takahashi T, Hirako M, Sasaki N, Domeki I. Концентрации эстрона и эстрадиола в плазме на протяжении беременности у крупного рогатого скота: связь со стадией беременности и числом плодов. Res Vet Sci 1999;66:129–133.

20. Ginther O, Kot K, Kulick L, Martin S, Wiltbank M. Связь между FSH и волнами роста фолликулов в яичниках в течение последних шести месяцев беременности у крупного рогатого скота. J Reprod Fertil 1996;108:271–278.

21. Savio J, Thatcher W, Badinga L, De la Sota R, Wolfeusun D. Регуляция смены доминантных фолликулов в течение эстрального цикла у коров. J Reprod Fertil 1993;97:197–203.

22. Gong J, Campbell B, Bramley T, Gutierrez C, Peters A, Webb R. Подавление секреции фолликулостимулирующего и лютеинизирующего гормонов и развития фолликулов в яичниках у тёлок при непрерывной инфузии агониста гонадотропин-рилизинг-гормона. Biol Reprod 1996;55:68–74.

23. Sakaguchi M. Проявление течки и повторное наступление анэструса после овуляций в ранний послеродовой период у фертильных молочных коров. Vet Rec 2010;167:446–450.

24. Savio J, Boland M, Hynes N, Roche J. Возобновление фолликулярной активности в ранний послеродовой период у молочных коров. J Reprod Fertil 1990;88:569–579.

25. Beam S, Butler W. Влияние энергетического баланса на развитие фолликулов и первую овуляцию у молочных коров после отёла. J Reprod Fertil 1999;54:411–424.

26. Wiltbank M, Gümen A, Sartori R. Физиологическая классификация ановуляторных состояний у крупного рогатого скота. Theriogenology 2002;57:21–52.

27. Markusfeld O. Неактивные яичники у высокопродуктивных молочных коров до осеменения: этиология и влияние на зачатие. Vet Rec 1987;121:149–153.

28. McDougall S, Burke C, MacMillan K, Williamson N. Характер развития фолликулов в периоды отсутствия овуляции у молочных коров пастбищного содержания после отёла. Res Vet Sci 1995;58: 212–216.

29. Vanholder T, Opsomer G, de Kruif A. Этиология и патогенез кистозных фолликулов яичников у молочного крупного рогатого скота: обзор. Reprod Nutr Dev 2006;46:105–119.

30. Cook D, Parfet J, Smith C, Moss G, Youngquist R, Garverick H. Характер секреции LH и FSH в процессе формирования индуцированных стероидами фолликулярных кист яичников у молочного крупного рогатого скота, а также характеристики гипоталамуса и гипофиза после их формирования. J Reprod Fertil 1991;91:19–28.

31. Ambrose D, Schmitt E, Lopes F, Mattos R, Thatcher W. Реакции яичников и эндокринной системы при лечении кистозных фолликулов яичников у молочных коров гонадотропин-рилизинг-гормоном и простагландином F2α с применением или без применения экзогенного прогестерона. Can Vet J 2004;45:931–937.

32. Opsomer G, Gröhn Y, Hertl J, Coryn M, Deluyker H, de Kruif A. Факторы риска послеродовых нарушений функции яичников у высокопродуктивных молочных коров в Бельгии: полевое исследование. Theriogenology 2000;53:841–857.

33. Williams G. Сосание как фактор, регулирующий возобновление воспроизводства у крупного рогатого скота после отёла: обзор. J Anim Sci 1990;68:831–852.

34. Ducrot C, Gröhn YT, Humblot P, Bugnard F, Sulpice P, Gilbert R. Послеродовой анэструс у мясного крупного рогатого скота во Франции: эпидемиологическое исследование. Theriogenology 1994;42:753–764.

35. Jolly P, McDougall S, Fitzpatrick L, MacMillan K, Entwistle K. Физиологическое влияние недостаточного питания на послеродовой анэструс у коров. J Reprod Fertil Suppl 1995;49:477–492.

36. Stevenson J, Lamb G, Hoffman D, Minton J. Взаимосвязь лактации и послеродового отсутствия овуляции у коров при подсосном содержании телят и при доении. Livestock Prod Sci 1997;50:57–74.

37. Montiel F, Ahuja C. Упитанность и сосание телёнком как факторы, влияющие на продолжительность послеродового анэструса у крупного рогатого скота: обзор. Anim Reprod Sci 2005;85:1–26.

38. Carruthers T, Hafs H. Сосание телёнком и четырёхкратное доение: влияние на овуляцию, эструс и сывороточные концентрации лютеинизирующего гормона, глюкокортикоидов и пролактина у коров голштинской породы после отёла. J Anim Sci 1980;50:919–925.

39. Santos J, Rutigliano H, Sá Filho M. Факторы риска, влияющие на возобновление эстральных циклов после отёла и выживаемость эмбрионов у лактирующих молочных коров. Anim Reprod Sci 2009;110:207–221.

40. Rajala P, Gröhn Y. Частота заболеваний и анализ факторов риска у коров финской айрширской породы. Acta Vet Scand 1998;39:1–13.

41. Kawashima C, Amaya Montoya C, Masuda Y и соавт. . Положительная связь между первой овуляцией после отёла и ростом удоя в начальный период лактации у молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:2279–2282.

1. Berardinelli J, Joshi P. Влияние введения быков в стадо в разные дни после отёла на возобновление циклической активности яичников у первотёлок мясных пород. J Anim Sci 2005;83:2106–2110.

2. Roelofs J, Soede N, Dieleman S, Voskamp-Harkema W, Kemp B. Непосредственное влияние присутствия быка на динамику концентрации лютеинизирующего гормона в плазме крови молочных коров с послеродовым анэструсом. Theriogenology 2007;68:902–907.

3. Wright I, Rhind S, Smith A, Whyte T. Влияние самок друг на друга в отношении продолжительности послеродового анэструса у коров мясных пород. Anim Prod 1994;59:49–53.

4. Pleasants A, McCall D. Взаимосвязь продолжительности анэструса после отёла, эстральных циклов, частоты зачатия и даты отёла у коров ангусской породы и помесей герефордской и фризской пород, телившихся в течение шести последовательных лет. Anim Prod 1993;56:187–192.

5. Richards M, Wettemann R, Schoenemann H. Алиментарный анэструс у коров мясных пород: изменение массы тела, упитанность, содержание лютеинизирующего гормона в сыворотке крови и активность яичников. J Anim Sci 1989;67:1520–1526.

6. Wright I, Rhind S, Russel A, Whyte T, McBean A, McMillen S. Влияние упитанности, потребления корма и временного отделения телёнка на продолжительность послеродового анэструса и связанные с ним концентрации LH, FSH и пролактина у коров мясных пород. Anim Prod 1987;45:395–402.

7. Moreira F, Orlandi C, Risco C, Mattos R, Lopes F, Thatcher W. Влияние предварительной синхронизации половых циклов и бычьего соматотропина на частоту наступления стельности при искусственном осеменении лактирующих молочных коров в установленное время. J Dairy Sci 2001;84:1646–1659.

8. Kim I, Suh G. Влияние степени снижения упитанности от сухостойного периода до периода непосредственно перед отёлом на последующее изменение упитанности, возникновение послеродовых заболеваний, метаболические показатели и воспроизводительную способность молочных коров голштинской породы. Theriogenology 2003;60:1445–1456.

9. Gümen A, Rastani R, Grummer R, Wiltbank M. Сокращение сухостойного периода и изменение рациона перед отёлом влияют на послеродовую овуляцию и показатели воспроизводства. J Dairy Sci 2005;88: 2401–2411.

10. Overton T. Кормление и содержание молочных коров для более раннего восстановления половой цикличности. В кн.: Материалы конференции по воспроизводству молочного крупного рогатого скота, Сакраменто, Калифорния, 8–9 ноября 2012 г. . Шампейн, Иллинойс: Совет по воспроизводству молочного крупного рогатого скота, 2012, с. 32–40. Доступно по адресу http://www.dcrcouncil.org/resources/ proceedingspresentations/2012-november-8-9,-sacramento,-california.aspx

11. Bauman D, Currie W. Распределение питательных веществ во время беременности и лактации: обзор механизмов, связанных с гомеостазом и гомеорезом. J Dairy Sci 1980;63:1514–1529.

12. Huszenicza G, Fodor M, Gacs M и соавт. . Бактериологическое состояние матки, возобновление циклической активности яичников и плодовитость коров после отёла в крупных молочных стадах. Reprod Domest Anim 1999;34:237–245.

13. Dourey A, Colazo M, Patricio P, Ambrose D. Связь результатов цитологического исследования эндометрия с интервалом до первой овуляции и наступлением стельности у молочных коров после отёла в одном стаде. Res Vet Sci 2011;91:e149–e153.

14. Bulman D, Lamming G. Случаи длительной активности жёлтого тела у нестельных молочных коров. Vet Rec 1977;100:550–552.

15. Kinsel M, Etherington W. Факторы, влияющие на воспроизводительные показатели молочных стад в Онтарио. Theriogenology 1998;50:1221–1238.

16. Hamilton S, Garverick H, Keisler D и др. Характеристика фолликулярных кист яичников и связанных с ними эндокринных профилей у молочных коров. Biol Reprod 1995;53:890–898.

17. Garbarino E, Hernandez J, Shearer J, Risco C, Thatcher W. Влияние хромоты на активность яичников у коров голштинской породы после отёла. J Dairy Sci 2004;87:4123–4131.

18. Peake K, Biggs A, Argo C и др. Влияние хромоты, субклинического мастита и снижения упитанности на воспроизводительные показатели молочных коров. Vet Rec 2011;168:301–306.

19. Smith J, Payne E, Tervit H и др. Влияние сосания телятами на эндокринные изменения, связанные с анэструсом, у молочных коров — однояйцевых близнецов. J Reprod Fert Suppl 1981;30:241–249.

20. Carruthers T, Convey E, Kesner J, Hafs H, Cheng K. Гипоталамо-гипофизарная гонадотропная система у молочных коров после отёла при наличии и отсутствии сосания телятами. J Anim Sci 1980;51:949–957.

21. Lucy M. Фертильность высокопродуктивных молочных коров: причины снижения и меры для её устойчивого повышения. Soc Reprod Fertil Suppl 2007;64:237–254.

22. Kyle S, Callahan C, Allrich R. Влияние прогестерона на проявление половой охоты при первой овуляции после отёла у молочных коров. J Dairy Sci 1992;75:1456–1460.

23. Morrow D, Roberts S, McEntee K, Gray H. Активность яичников и инволюция матки после отёла у молочных коров. J Am Vet Med Assoc 1966;149:1596–1609.

24. Lucy M, Billings H, Butler W и др. Эффективность интравагинального прогестеронового вкладыша и инъекции PGF2α для синхронизации половой охоты и сокращения периода до наступления стельности у мясных коров после отёла, тёлок мясных пород в период полового созревания и тёлок молочных пород. J Anim Sci 2001;79:982–995.

25. Gümen A, Guenther J, Wiltbank M. Размер фолликулов и ответ на протокол Ovsynch по сравнению с выявлением половой охоты у лактирующих молочных коров с отсутствием и наличием овуляции. J Dairy Sci 2003;86:3184–3194.

26. Rajamahendran R, Ambrose D, Burton B. Применение ультразвукового исследования в реальном времени в клинической практике и исследованиях воспроизводства крупного рогатого скота: обзор. Can Vet J 1994;35:563–572.

27. Colazo M, Ambrose D, Kastelic J. Практическое применение трансректального ультразвукового исследования в управлении воспроизводством крупного рогатого скота. В кн.: Wittwer F и др. (ред.) Современные вопросы продуктивности и ветеринарии жвачных животных: XXVI Всемирный конгресс по буиатрии, 14–18 ноября 2010 г., Сантьяго, Чили. Будапешт: Всемирная ассоциация буиатров, 2010, с. 146–156.

28. Yilmazbas-Mecitoglu G, Karakaya E, Keskin A, Alkan A, Okut H, Gümen A. Влияние предварительной синхронизации с помощью гонадотропин-рилизинг-гормона и простагландина F2α либо прогестерона перед применением протокола Ovsynch у молочных коров без половых циклов. J Dairy Sci 2012;95: 7186–7194.

29. Stevenson J, Tenhouse D, Krisher R и др. Выявление отсутствия овуляции с помощью детекторов садок и трансректального ультразвукового исследования перед применением прогестерона в протоколе осеменения в установленное время. J Dairy Sci 2008;91:2901–2915.

30. Mazeris F. DeLaval Herd Navigator®: проактивное управление стадом. В сб.: Материалы Первой Североамериканской конференции по точному управлению молочным стадом, 2010, с. 25–26.

31. Chagas L, Bass J, Blache D и др. Новые взгляды на роль питания и метаболических приоритетов в снижении плодовитости высокопродуктивных молочных коров. J Dairy Sci 2007;90:4022–4032.

32. Gong J, Lee W, Garnsworthy P, Webb R. Влияние обусловленного рационом повышения концентрации инсулина в крови в ранний период после отёла на воспроизводительную функцию молочных коров. Reproduction 2002;123:419–427.

33. Dyck B, Colazo M, Ambrose D, Dyck M, Doepel L. Источник и содержание крахмала в рационах молочных коров после отёла: влияние на метаболиты плазмы крови и репродуктивные процессы. J Dairy Sci 2007;94:4636–4646.

34. Chagas L, Gore P, Meier S, Macdonald K, Verkerk G. Влияние монопропиленгликоля на лютеинизирующий гормон, метаболиты и продолжительность ановуляторного периода после отёла у первотёлок молочных пород. J Dairy Sci 2007;90:1168–1175.

35. Gardner N, Reynolds C, Phipps R, Jones A, Beever D. Влияние различных кормовых добавок в рационе до и после отёла на воспроизводительные показатели молочных коров. В кн.: Фертильность высокопродуктивных молочных коров. Специальное издание Британского общества зоотехнии № 26, 2001, с. 313–321.

36. Colazo M, Hayirli A, Doepel L, Ambrose D. На воспроизводительные показатели молочных коров влияют ограничение кормления перед отёлом и источник жирных кислот в рационе. J Dairy Sci 2009;92:2562–2571.