Воспроизводство крупного рогатого скота

Многие различные вакцины против C. fetus доступны для использования у крупного рогатого скота, включая вакцины как с масляным адъювантом, так и абсорбированные гидроксидом алюминия.¹³ Бактерины в масляном адъюванте более эффективны и обеспечивают более длительный иммунитет и защиту после однократного введения.⁵⁵ В исследовании, проведенном в стадах в Аргентине, две коммерческие вакцины, абсорбированные гидроксидом алюминия были признаны неэффективными в предотвращении репродуктивных потерь из-за C. fetus.^13,56 Однократное подкожное введение телкам вакцины против кампилобактериоза с масляным адъювантом продемонстрировало защиту от репродуктивных потерь. Однако вакцины с масляным адъювантом вызывают локализованные гранулемы и гранулемы в месте инъекции.¹³

Вибрин (Pfizer Animal Heath) - единственный в США бактерицидный препарат против C. fetus с добавлением масла, который был исследован на быках.¹³ Две дозы по 5-мл, что в 2,5 раза превышает дозу, рекомендованную для вакцинации коров, следует вводить подкожно племенным быкам с 4-недельным интервалом, начиная за 8 недель до случного сезона. Ежегодная ревакцинация в той же дозе рекомендуется за 4 недели до случного сезона.^13,57

Контроль

Ликвидация естественного осеменения и использование ИО - лучшее средство борьбы с венерическим кампилобактериозом крупного рогатого скота. Тем не менее, производители часто считают эту рекомендацию слишком трудной, чтобы следовать ей. Если используется ИО, сперма должна быть должным образом проверена на C. fetus venerealis и содержать антибиотик в разбавителе, чтобы гарантировать, что контаминированная сперма не приведет к реинтродукции бактерии в стадо. Если ИО невозможно, то предыдущая группа быков должна быть заменена молодыми быками, ранее не участвовавшими в разведении.¹⁴

Лечение

Из-за отсутствия доступности и эффективности некоторых антибиотиков (стрептомицин), стандартное лечение животных, инфицированных C. fetus venerealis сосредоточилось на устранения инфекции посредством иммунотерапии, которая включает иммунизацию животных соответствующим адъювантным антигеном. Систематическая иммунизация коров, которые были активно или пассивно иммунизированы C. fetus venerealis вылечила этих животных от состояния вагинального носительства.^24,58,59 Кроме того, систематическая иммунизация может также излечить или устранить инфекцию в течение 9 недель или более у некоторых быков, инфицированных C. fetus venerealis.^23,60,61 Иммунизация индуцирует как локальную, так и системную выработку антител IgG, которая предотвращает адгеренцию (прилипание) микробов, обездвиживает бактерии, активирует комплемент и опсонизирует бактерии для фагоцитоза.²⁴ Чаще всего для терапевтической иммунотерапии используются вакцинные препараты с масляным адьювантом.

Ссылки

1. Timoney JF, Gillespie JH, Scott FW, Barlough JE. Род Campylobacter . В кн.: Микробиология инфекционных болезней домашних животных Хагана и Брунера , 8-е изд. Итака, штат Нью-Йорк: Cornell University Press, 1988, с. 153–160.

2. Mshelia G, Amin J, Woldehiwet R, Murray R, Egwu G. Эпидемиология генитального кампилобактериоза крупного рогатого скота: географическое распространение и последние достижения в области молекулярных методов диагностики. Reprod Domest Anim 2010;45:e221–e230.

3. Walker R. Генитальный кампилобактериоз крупного рогатого скота. В кн.: Howard JL, Smith RA (ред.) Современная ветеринарная терапия 4: лечение сельскохозяйственных животных . Филадельфия: WB Saunders, 1999, с. 323–326.

4. Office International des Epizooties, 2005. Кампилобактериоз. Центр продовольственной безопасности и общественного здравоохранения. Институт международного сотрудничества в области биологических препаратов для животных, Колледж ветеринарной медицины Университета штата Айова, Эймс, штат Айова. Доступно по адресу http://www.cfsph.iastate.edu/ (декабрь 2012).

5. Dekeyser P. Генитальный кампилобактериоз крупного рогатого скота. В кн.: Morrow DA (ред.) Современные методы лечения в териогенологии , 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders, 1986, с. 263–266.

6. Bier P, Hall C, Duncan J, Winter A. Экспериментальное заражение Campylobacter fetus быков разного возраста. Vet Microbiol 1977;2:13–27.

7. Wagner W, Dunn H, Vanvleck L. Частота вибриоза на станции искусственного осеменения. Cornell Vet 1965;55:209–220.

8. Strickland L, Wolfe D, Carson R и соавт. . Поверхностная анатомия эпителия полового члена и препуция быков. Clin Theriogenol 2011;3:362 (аннотация).

9. Mshelia M, Singh J, Amin J, Woldehiwet Z, Egwu G, Murray R. Генитальный кампилобактериоз крупного рогатого скота: обзор. CAB Rev Perspect Agr Vet Sci Nutr Nat Resources 2007;2:080. Доступно по адресу http://www.cabi.org/cabreviews/?page=4051&reviewid=800 00&site=167

10. Roberts J. Бесплодие у коров. В кн.: Roberts S (ред.) Ветеринарное акушерство и болезни половых органов (териогенология) , 2-е изд. Вудсток, Вермонт: издано автором, 1971, с. 376–506.

11. Campero C. Репродуктивные болезни крупного рогатого скота: вчера и сегодня. Acad Nac Agron Vet An 2000;53:88–112.

12. Givens M. Клинический подход к инфекционным причинам бесплодия мясного крупного рогатого скота, основанный на доказательствах. Theriogenology 2006;66: 648–654.

13. BonDurant R. Болезни крупного рогатого скота, передающиеся половым путём: естественное течение, диагностика и роль вакцин в их профилактике. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2005;21:383–408.

14. Peter D. Болезни крупного рогатого скота, передающиеся половым путём. В кн.: Youngquist RS (ред.) Современная терапия в териогенологии крупных животных . Филадельфия: WB Saunders, 1997, с. 355–363.

15. Morrell E, Barbeito C, Odeon C, Gimeno E, Campero C. Гистопатологические, иммунологические, лектиногистохимические и молекулярные данные при самопроизвольных абортах у коров, вызванных Campylobacter fetus . Reprod Domest Anim 2011;46:309–315.

16. Corbeil L, Schurig G, Duncan J, Wilkie B, Winter A. Иммунитет в репродуктивном тракте коров на примере ответа на Campylobacter fetus . Adv Exp Med Biol 1981;137:729–743.

17. Corbeil L, Schurig G, Duncan J, Corbeil R, Winter A. Классы иммуноглобулинов и биологические функции антител к Campylobacter (Vibrio) fetus в сыворотке крови и цервиковагинальной слизи. Infect Immun 1974;10:422–429.

18. Corbeil L, Corbeil R, Winter A. Генитальный вибриоз крупного рогатого скота: активность воспалительных клеток в защитном иммунитете. Am J Vet Res 1975;36:403–406.

19. Schurig G, Hall C, Corbell L, Duncan J, Winter A. Генитальный вибриоз крупного рогатого скота: излечение генитальной инфекции у самок посредством системной иммунизации. Infect Immun 1975;11:245–251.

20. Zemjanis R. Вакцинация для повышения репродуктивной эффективности крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 1974;165:689–692.

21. Karmali M, Skirrow M. Таксономия рода Campylobacter . В кн.: Butzler JP (ред.) Кампилобактерная инфекция человека и животных . Бока-Ратон, Флорида: CRC Press, 1984, с. 1.

22. Bier P, Hall C, Duncan J, Winter A. Определение содержания иммуноглобулинов в секрете репродуктивного тракта быков. Vet Microbiol 1977;2:1–12.

1. Vasquez L, Ball L, Bennett B и др. . Генитальный кампилобактериоз (вибриоз) крупного рогатого скота: вакцинация экспериментально заражённых быков. Am J Vet Res 1983;44:1553–1557.

2. Cobo E, Corbeil L, BonDurant R. Иммунитет к инфекциям нижних отделов половых путей быков. J Reprod Immunol 2011;89:55–61.

3. Hoffer M. Кампилобактериоз крупного рогатого скота: обзор. Can Vet J 1981;22:327–330.

4. Samuelson J, Winter A. Вибриоз крупного рогатого скота: природа носительства у быков. J Infect Dis 1966;116:581–592.

5. Campero C, Moore D, Odeon A, Cipolla A, Odriozola E. Этиология абортов у крупного рогатого скота в Аргентине. Vet Res Commun 2003;27:359–369.

6. Anderson M. Инфекционные причины абортов у крупного рогатого скота в середине и на поздних сроках стельности. Theriogenology 2007;68:474–486.

7. Schulze F, Bagon A, Mueller W, Hotzel H. Идентификация подвидов Campylobacter fetus с помощью фенотипической дифференциации и ПЦР. J Clin Microbiol 2006;44:2019–2024.

8. Office International des Epizooties. Генитальный кампилобактериоз крупного рогатого скота. В кн.: Руководство OIE по диагностическим тестам и вакцинам для наземных животных , 5-е изд. Париж: OIE, 2004, с. 439–450. Доступно по адресу http://www.oie.int/ (декабрь 2012).

9. Chang W, Ogg J. Трансдукция и мутация, обеспечивающая устойчивость к глицину, у Vibrio fetus . Am J Vet Res 1971;32:649–653.

10. Salama M, Garcia M, Taylor D. Дифференциация подвидов Campylobacter fetus по размерам геномной ДНК. Int J Syst Bacteriol 1992;42:446–450.

11. On S, Harrington C. Оценка численного анализа профилей ДНК, полученных методом PFGE, для дифференциации Campylobacter fetus на уровне подвидов путём сравнения с результатами фенотипических исследований, ПЦР и секвенирования 16S рДНК. J Appl Microbiol 2001;90:285–293.

12. Bryner J. Аборты у крупного рогатого скота, вызванные Campylobacter fetus . В кн.: Kirkbride C (ред.) Лабораторная диагностика абортов у сельскохозяйственных животных . Эймс, Айова: Iowa State University Press, 1990, с. 70–81.

13. Redwood D, Lander K, Gill K. Методы диагностики кампилобактериоза у животных. Центральная ветеринарная лаборатория, Уэйбридж, 1989.

14. Harwood L, Thomann A, Brodard I, Makaya P, Perreten V. Campylobacter fetus подвида venerealis: транспортная среда для обогащения и ПЦР. Vet Rec 2009;165:507–508.

15. Garcia M, Stewart R, Ruckerbauer G. Количественная оценка транспортно-накопительной среды для Campylobacter fetus . Vet Rec 1984;115:434–436.

16. Figueiredo J, Pellegrin A, Foscolo C, Machada R, Miranda K, Lage A. Оценка метода прямой иммунофлуоресценции для диагностики генитального кампилобактериоза крупного рогатого скота. Rev Latinoam Microbiol 2002;44:118–123.

17. Campero C, Anderson M, Walker R и др. . Иммуногистохимическое выявление Campylobacter fetus при естественных случаях аборта у крупного рогатого скота и овец. J Vet Med B 2005;52:138–141.

18. Lander K. Разработка транспортно-накопительной среды для Campylobacter fetus . Br Vet J 1990;146:327–333.

19. Hewson P, Lander K, Gill K. Иммуноферментный анализ для выявления антител к C. fetus в вагинальной слизи коров. Res Vet Sci 1985;38:41–45.

20. Repiso M, Baraibar M, Olivera M, Silveyra S, Battistoni J. Разработка и оценка иммуноферментного анализа для количественной оценки гуморального ответа у крупного рогатого скота, вакцинированного против Campylobacter fetus . Am J Vet Res 2002;63:586–590.

21. Hum S, Stephens L, Quinn C. Диагностика с помощью ИФА абортов у крупного рогатого скота, вызванных Campylobacter fetus . Aust Vet J 1991;68:272–275.

22. Brooks B, Davenish J, Lutze-Wallace C, Milnes D, Robertson R, Berlie-Surujballi G. Оценка иммуноферментного анализа на основе моноклональных антител для выявления Campylobacter fetus в образцах смывов с препуция и вагинальной слизи крупного рогатого скота. Vet Microbiol 2004;103:77–84.

23. Devenish J, Brooks B, Perry K и др. . Валидация иммуноферментного анализа с захватом антигена на основе моноклональных антител для выявления Campylobacter fetus. Clin Diagn Lab Immunol 2005;12:1261–1268.

24. Penner J. Род Campylobacter: десятилетие достижений. Clin Microbiol Rev 1988;1:157–172.

25. Mueller W, Hotzel H, Schulze F. Идентификация и дифференциация Campylobacter fetus подвидов методом ПЦР. Tierarztl Wochenschr 2003;110:55–59.

26. Hum S, Quinn K, Brunner J, On S. Оценка ПЦР-анализа для идентификации и дифференциации Campylobacter fetus подвидов. Aust Vet J 1997;75:827–831.

27. Willoughby K, Nettleton P, Quirie M и др. Мультиплексная полимеразная цепная реакция для выявления и дифференциации Campylobacter fetus подвида fetus и Campylobacter fetus подвида venerealis: применение для выделенных в Великобритании изолятов C. fetus и других Campylobacter spp. J Appl Microbiol 2006;99:756–766.

28. Mshelia G. Генитальный кампилобактериоз крупного рогатого скота и эффективность воспроизводства в бассейне озера Чад в Нигерии. Диссертация на соискание степени доктора философии, Университет Майдугури, Нигерия, 2008.

29. Wassenaar T, Newell D. Генотипирование Campylobacter spp. Appl Environ Microbiol 2000;66:1–9.

30. McMillan L, Fordyce G, Doogan V, Lew A. Сравнение культурального метода и нового анализа с использованием 5′-нуклеазы Taq для непосредственного выявления Campylobacter fetus подвида venerealis в клинических образцах от крупного рогатого скота. J Clin Microbiol 2006;44:938–945.

31. Moulhuijzen P, Lew-Tabor A, Wlodek B и др. Геномный анализ Campylobacter fetus подвидов: выявление предполагаемых факторов вирулентности и мишеней для диагностических анализов. BMC Microbiol 2009;9:86.

32. Abril C, Vilei E, Brodard I, Burnens A, Frey J, Miserez R. Обнаружение вставочного элемента ISCfe1: новый инструмент для дифференциации Campylobacter fetus подвидов. Clin Microbiol Infect 2007;13:993–1000.

33. Hoerlein A, Carroll E. Продолжительность иммунитета к генитальному вибриозу крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 1970;156:775–778.

34. Cobo E, Cipolla A, Morsella C, Cano D, Campero C. Влияние двух коммерческих вакцин против Campylobacter fetus подвидов на тёлок, подвергшихся естественному заражению. J Vet Med B 2003;50:75–80.

35. Cortese V. Вакцины против болезней репродуктивной системы крупного рогатого скота. В кн.: Smith BP (ред.) Внутренние болезни крупных животных, 2-е изд. Сент-Луис, Миссури: Mosby, 2002, с. 1421–1423.

36. Berg R, Firehammer B, Border M, Myers L. Влияние пассивно и активно приобретённых антител на кампилобактериоз (вибриоз) крупного рогатого скота. Am J Vet Res 1979;40:21–25.

37. Schurig G, Hall C, Burda K, Corbeil L, Duncan J, Winter A. Характер инфицирования тёлок после цервиковагинального или внутриматочного введения Campylobacter ( Vibrio ) fetus venerealis . Cornell Vet 1974;64:533–548.

38. Ball L, Dargatz D, Cheney J, Mortimer R. Борьба с венерическими заболеваниями в заражённых стадах. Vet Clin North Am Food Anim Pract 1987;3:561–574.

39. Bouters R, De Keyser J, Vandeplassche M и др. . Vibrio fetus Инфекция у быков: лечебная и профилактическая вакцинация. Br Vet J 1973;129:52–57.

Глава 56

Инфекционные агенты: Трихомониаз

Mike Thompson

Ветеринарная клиника Willow Bend, Холли-Спрингс, Миссисипи, США

Вступление

Трихомониаз коварное венерическое заболевание крупного рогатого скота, вызванное простейшим Tritrichomonas foetus. В течение прошлого столетия репродуктивная недостаточность изза T. fetus была признана во всем мире. Быки обычно являются бессимптомными носителями, в то время как самки несут основной груз заболевания, которое чаще всего проявляется ранними эмбриональными потерями. В то время как самки обладают достаточной способностью избавиться от инфекции, быки могут стать хроническими бессимптомными носителями, и эта вероятность возрастает с увеличением возраста быка. Тестирование на T. fetus проблематично как у самцов, так и у самок, так как необходимо проводить множество последовательных тестов для достижения удовлетворительной чувствительности и специфичности. В Соединенных Штатах не существует узаконенного эффективного лечения трихомониаза, что приводит к установлению правил, требующих удаления положительных быков из стада. Вакцина существует, но ее эффективность была поставлена под сомнение, особенно при использовании на более старых быках. Биобезопасность играет важную роль в предотвращении низкого уровня воспроизводства в скотоводстве. Для обозначения инфекций T. fetus у крупного рогатого скота используются термины «трихомониаз» и «трихомоноз».

Характеристика организма

Tritrichomonas foetus представляет собой подвижный жгутиковый простейший организм размером 10–15 × 5–10 мкм. Трофозоитная форма имеет три передних и один задний жгутики и одну волнообразную мембрану вдоль длинной оси организма.^1,2 Форма псевдоцисты обычно возникает, когда трофозоиты подвергаются стрессовым условиям. Во время трансформации из трофозоита в псевдоцисту организм теряет свою каплевидную форму, становится более округлым и утрачивает жгутики. В псевдоцисте внутренние клеточные структуры продолжают реплицироваться, что приводит к образованию многоядерного организма.^1,2 Этот организм является микроаэрофильным, лучше всего выживающим в зонах с низким содержанием кислорода. При наблюдении во влажных нефиксированных препаратах Т. fetus совершают вращательные толчкообразные движения.¹ Хотя внешний вид и движения организма в питательных средах довольно характерны, диагносты должны знать, что в культурах препуциальных соскобов или цервикальной слизи могут присутствовать трихомонады, отличные от T. fetus. Эти микроорганизмы могут быть причиной ложно-положительных результатов исследований^1–7 (Рисунок 56.1).

Клинические признаки

Клинические признаки трихомониаза у самцов встречаются редко или вообще отсутствуют, хотя при T. fetus наблюдался умеренный баланопостит. У самок инфекция характеризуется ранней эмбриональной смертностью, посткоитальной пиометрой и иногда абортом.^1,3,6,8 Трихомониаз следует подозревать в стадах с низким общим индексом стельности и широким распределением сроков стельности. В анамнезе использование ранее случавшихся быков с неизвестным статусом по трихомониазу, наряду с признаками ранней эмбриональной гибели и посткоитальной пиометры, должны вызывать подозрения на присутствие T. foetus в стадах с плохим уровнем воспроизводства.^1,4,8

После заражения быки могут стать бессимптомными носителями и не способны устранить инфекцию. Уже давно существует догмат о том, что у более старых быков гистологическая структура полового члена и препитуального эпителия отличаются от более молодых быков, при этом крипты и складки с возрастом увеличиваются и становятся глубже.¹ Хотя с этим и связывали то, что возрастные быки чаще становятся хроническими носителями T. fetus, Strickland и соавт.⁹ не выявили статистических различий в гистологических образцах от более молодых быков по сравнению с таковыми от более старых быков в отношении эпителия препуция и полового члена, и количества и площади эпителиальных складок. Зараженные коровы и телки формируют иммунный ответ и зачастую способны уничтожить микроорганизм через 6–12 недель после заражения. Самки реже становятся носителями, сохраняя это состояние на протяжении всей беременности и в течение следующего случного сезона или дольше.^1,3,4,6,8

Диагностика

Диагностические тесты, обычно используемые для выявления T. fetus, включают культивирование с идентификацией под микроскопом и полимеразную цепную реакцию (ПЦР).^1,3 Организм иногда можно обнаружить с помощью микроскопического исследования свежих (без питательной среды) образцов, но этому методу не хватает чувствительности. Как при культивировании, так и при проведении ПЦР образец инкубируют в среде Diamond или, чаще, в коммерчески доступном двухкамерном пакете, заполненном средой (InPouch ™).⁴