Воспроизводство крупного рогатого скота

1. Houe H. Эпидемиологические особенности и экономическое значение инфекций, вызываемых вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV). Vet Microbiol 1999;64:135–144.

2. Hessman B, Fulton R, Sjeklocha D. Оценка экономических последствий, состояния здоровья и продуктивности общей популяции крупного рогатого скота после контакта с животными, персистентно инфицированными вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, на площадке начального откорма. Am J Vet Res 2009;70:73–85.

3. Kirkland P, Mackintosh S, Moyle A. Последствия широкого использования спермы быка, персистентно инфицированного пестивирусом. Vet Rec 1994;135:527–529.

4. McClurkin A, Coria M, Cutlip R. Воспроизводительная способность внешне здорового крупного рогатого скота, персистентно инфицированного вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. J Am Vet Med Assoc 1979;174:1116–1119.

5. Grooms D. Последствия заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота для воспроизводства. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2004: 20:5–19.

6. Gregg K, Chen S, Guerra Tи др.Чувствительный и эффективный метод выявления вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVD) в отдельных эмбрионах крупного рогатого скота перед реимплантацией.Theriogenology 2009;71:966–974.

7. Houe H. Экономические последствия инфекции BVDV в молочном скотоводстве.Biologicals 2003;31:137–143.

8. Lindberg A, Alenius S. Принципы искоренения инфекции, вызываемой вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV), в популяциях крупного рогатого скота.Vet Microbiol 1999;64:197–222.

9. Houe H, Lindberg A, Moennig V. Стратегии тестирования в рамках европейских кампаний по борьбе с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота и его искоренению.J Vet Diagn Invest 2006;18:427–436.

10. Grom J, Barlic-Maganja D. Вирусная диарея крупного рогатого скота (BVD): программа борьбы и искоренения инфекции в племенных стадах Словении.Vet Microbiol 1999;64:259–264.

11. Ferrari G, Scicluna M, Bonvicini Dи др.Программа борьбы с вирусной диареей крупного рогатого скота (BVD) в одном из районов провинции Рим (Италия).Vet Microbiol 1999;64:237–245.

12. Synge B, Clark A, Moar J, Nicolson J, Nettleton P, Herring J. Борьба с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота на Шетландских островах.Vet Microbiol 1999;64:223–229.

13. Walz P, Givens M, Cochran A, Navarre C. Влияние введения дексаметазона быкам с локализованной инфекцией семенников, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота.Can J Vet Res 2008;72:56–62.

14. Passler T, Walz P, Ditchkoff Sи др.Совместное содержание беременных белохвостых олених и крупного рогатого скота с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, приводит к рождению оленят с персистентной инфекцией.Vet Microbiol 2009;134:362–367.

15. Singh E. Возможности использования эмбрионов для борьбы с болезнями.Theriogenology 1987;27:9–20.

16. Singh E, Eaglesome M, Thomas F, Papp-Vid G, Hare W. Перенос эмбрионов как способ предотвращения передачи вирусных инфекций. Воздействие in vitro вирусов Акабане, катаральной лихорадки овец и вирусной диареи крупного рогатого скота на эмбрионы крупного рогатого скота до имплантации.Theriogenology 1982;17:437–444.

17. Wentink G, Aarts T, Mirck M, Van Exsel A. Телёнок от тёлки с персистентной инфекцией, родившийся после переноса эмбриона и обладающий нормальным иммунитетом к BVDV.Vet Rec 1991;129:449–450.

18. Bak A, Callesen, Meyling A, Greve T. Телята, родившиеся после переноса эмбрионов от доноров с персистентной инфекцией, вызванной вирусом BVD.Vet Rec 1992;131:37.

19. Brock K, Lapin D, Skrade D. Перенос эмбрионов от крупного рогатого скота — доноров с персистентной инфекцией, вызванной вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота.Theriogenology 1997;47:837–844.

20. Smith A, Grimmer S. Рождение телёнка, свободного от BVDV, от донора эмбриона с персистентной инфекцией.Vet Rec 2000;146:49–50.

21. Guerin B. Гарантированный ветеринарный статус при производстве эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro, и торговле ими.Livestock Prod Sci 2000;62:271–285.

22. Lindberg A, Ortman K, Alenius S. Сероконверсия к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) у молочных тёлок после переноса эмбрионов. В: Материалы 14-го ICAR, 2–6 июля, 2000;1:250 (аннотация).

23. Drew T, Sandvik T, Wakeley P, Jones T, Howard P. Вирус BVD генотипа 2 выявлен у крупного рогатого скота в Великобритании.Vet Rec 2002;51:551.

24. Waldrop J, Stringfellow D, Galik Pи др.Инфекционность вируса вирусной диареи крупного рогатого скота, связанного с эмбрионами крупного рогатого скота, полученными in vivo.Theriogenology 2004;62:387–397.

25. Waldrop J, Stringfellow D, Riddell Kи др.Различные штаммы нецитопатогенного вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) различаются по сродству к эмбрионам крупного рогатого скота, полученным in vivo.Theriogenology 2004;62:45–55.

26. Waldrop J, Stringfellow D, Galik Pи др.Сероконверсия у телят после внутривенного введения эмбрионов, подвергнутых воздействию вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) in vitro.Theriogenology 2005;65:594–605.

27. Gard J, Givens M, Marley Mи др.Наличие вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) в отдельных эмбрионах крупного рогатого скота до имплантации, полученных in vivo и in vitro, после искусственного воздействия вируса.Theriogenology 2009;71:1238–1244.

28. Gard J, Givens M, Marley Mи др.Внутриматочное введение вируса вирусной диареи крупного рогатого скота серонегативным тёлкам одновременно с переносом эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vivo.Theriogenology 2010;73:1009–1017.

29. Bielanski A, Sapp T, Lutze-Wallace C. Связь эмбрионов крупного рогатого скота, полученных путём оплодотворения in vitro, с нецитопатогенным штаммом BVDV типа II. Theriogenology 1998;49:1231–1238.

30. Meyers G, Ege A, Fetzer C и др. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота: предотвращение персистирующей инфекции плода сочетанием двух мутаций, затрагивающих РНКазу Erns и протеазу Npro. Virology 2007;81:3327–3338.

31. Galik P, Givens M, Stringfellow D, Crichton E, Bishop M, Eilertsen K. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) и антитела к BVDV в объединённых образцах фолликулярной жидкости. Theriogenology 2002;57:1219–1227.

32. Gordon I. Эмбрионы, полученные в лабораторных условиях. В кн.: Gordon I (ред.) Лабораторное получение эмбрионов крупного рогатого скота , 2-е изд. Уоллингфорд, Великобритания: CAB International, 1994, с. 15–20.

33. Bielanski A, Loewen K, Del Campo M, Sirard M, Willadsen S. Выделение герпесвируса крупного рогатого скота-1 (BVH-1) и вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) при получении эмбрионов крупного рогатого скота in vitro. Theriogenology 1993;40:531–538.

34. Bielanski A, Stewart B. Повсеместно распространённые микроорганизмы, выделенные из системы оплодотворения in vitro (IVF). Theriogenology 1996;45:269 (аннотация).

35. Bielanski A, Algire J, Lalonde A, Nadin-Davis S. Передача вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) реципиентам через эмбрионы, полученные путём оплодотворения in vitro, но не их потомству. Theriogenology 2009;71:499–508.

36. Marquant-Le Guienne B, Remond M, Cosquer R и др. Воздействие вируса ящура на эмбрионы, полученные in vitro. Theriogenology 1998;50:109–116.

37. Stringfellow D, Givens M. Предотвращение передачи болезней при переносе эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vivo. Livestock Prod Sci 2000;62:237–251.

38. Stringfellow D, Givens M, Waldrop J. Вопросы биобезопасности, связанные с применяемыми и новыми эмбриональными технологиями. Reprod Fertil Dev 2004;16:93–102.

39. Engles M, Ackermann M. Патогенез герпесвирусных инфекций жвачных животных. Vet Microbiol 1996;53:3–15.

40. Nettleton P, Vilcek S. Выявление пестивирусов в сыворотке крови крупного рогатого скота. В кн.: Материалы международного семинара, организованного EDQM, Париж , 2001, с. 69–75.

41. Vanroose G, Nauwynek H, Van Soom H и др. Структурные особенности блестящей оболочки эмбрионов, полученных in vitro: исследование методами сканирующей электронной и конфокальной лазерной сканирующей микроскопии. Biol Reprod 2000;62:463–469.

42. Bielanski A, Dubuc B. Оплодотворение in vitro яйцеклеток коров, экспериментально инфицированных нецитопатогенным штаммом вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Anim Reprod Sci 1995;38:215–221.

43. Booth P, Collins M, Jenner L и др. Нецитопатогенный вирус вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) снижает частоту дробления, но повышает выход бластоцист

среди эмбрионов, полученных in vitro. Theriogenology 1998; 50:769–777.

1. Vanroose G, Nanwynek H, Vansoom A, Vanopdenbosch E, DeKruif A. Влияние герпесвируса крупного рогатого скота-1 и вируса вирусной диареи крупного рогатого скота на развитие эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro. Mol Reprod Dev 1999;54:255–263.

2. Dinkin M, Stallknecht D, Brackett B. Снижение инфекционности вируса эпизоотической геморрагической болезни, связанного с эмбрионами крупного рогатого скота, полученными in vitro, с помощью неспецифической протеазы. Anim Reprod Sci 2001;65:205–213.

3. Bielanski A, Jordan L. Промывание, как и промывание с последующей обработкой трипсином, неэффективно для удаления нецитопатогенного вируса вирусной диареи крупного рогатого скота из яйцеклеток или эмбрионов крупного рогатого скота после экспериментального заражения вирусом системы оплодотворения in vitro. Theriogenology 1996;46:1467–1476.

4. Trachte E, Stringfellow DA, Riddell KP, Galik PK, Riddell MG, Wright J. Промывание и обработка трипсином эмбрионов крупного рогатого скота, полученных in vitro и подвергнутых воздействию вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Theriogenology 1998;50:717–726.

5. Givens M, Galik P, Riddell K, Brock K, Stringfellow D. Количество и инфекционность вируса вирусной диареи крупного рогатого скота, связанного с эмбрионами, и противовирусное действие бластоцисты препятствуют инфицированию клеток маточной трубы in vitro. Theriogenology 1999;52:887–900.

6. Givens M, Galik P, Riddell K, Stringfellow D. Клетки маточной трубы остаются неинфицированными после культивирования с эмбрионами, полученными in vitro и подвергнутыми воздействию вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Vet Microbiol 1999;70:7–20.

7. Givens M, Galik P, Riddell K, Brock K, Stringfellow D. Репликация и персистенция различных штаммов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота в системе получения эмбрионов in vitro. Theriogenology 2000;54:1093–1107.

8. Без указания автора. Кодекс здоровья наземных животных, глава 4.8. www. oie.int/index.php?id=169&L=0&htmfile=chapitre_1.4.8.htm.

9. Nibart M, Marquant-Le Guienne B, Humbolt P. Общие санитарные процедуры при получении эмбрионов in vitro. В кн.: Stringfellow DA, Seidel SM (ред.) Руководство Международного общества трансплантации эмбрионов , 3-е изд. Савой, штат Иллинойс: Международное общество по трансплантации эмбрионов, 1998, с. 67–77.

10. Edens M, Galik P, Riddell K, Givens M, Stringfellow D, Loskutoff N. Герпесвирус крупного рогатого скота -1, связанный с отдельными эмбрионами, обработанными трипсином, не был заразен для клеток маточных труб. Theriogenology 2003;60:1495–1504.

11. Shin T, Sneed L, Hill J, Westhusin M. Высокая частота нарушений развития у плодов крупного рогатого скота, полученных путём клонирования клеток, инфицированных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота. Theriogenology 2000;53;243.

12. Stringfellow D, Riddell K, Givens M и др. Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) в клеточных линиях, используемых для клонирования соматических клеток. Theriogenology 2005;63:1004–1013.

13. Givens M, Marley M. Инфекционные причины гибели эмбрионов и плодов. Theriogenology 2008;3:270–285.

14. Galik P, Gard J, Givens M и др. Влияние овечьего интерферона-тау на репликацию вируса вирусной диареи крупного рогатого скота и герпесвируса крупного рогатого скота -1. Reprod Fertil Dev 2007;20:156–157.

15. Givens M, Stringfellow D, Riddell K и др. Здоровые телята, полученные после переноса эмбрионов, оплодотворённых in vitro и культивированных в присутствии противовирусного соединения. Theriogenology 2006;65:344–355.

16. Givens M, Stringfellow D, Dykstra C и др. Профилактика и устранение инфекций, вызванных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота, в фибробластах плода. Antiviral Res 2004;64:113–118.

17. Newcomer B, Marley M, Ridpath J и др. Эффективность противовирусного соединения в подавлении репликации нескольких видов пестивирусов Antiviral Res 2012;96:127–129.

18. Walker A, Kimura K, Roberts R. Экспрессия вариантов бычьего интерферона-тау в зависимости от пола и возраста зародышей. Theriogenology 2009;72:44–53.

Глава 81

Экстракорпоральное оплодотворение

Джон Ф. Хаслер¹ и Дженнифер П. Барфилд²

1 Bioniche Animal Health, Inc., Лапорт, Колорадо, США

2 Кафедра биомедицинских наук, Лаборатория репродукции животных и биотехнологии, Университет штата Колорадо, Форт-Коллинс, Колорадо, США

Введение

На латыни in vitro означает «в стекле», а экстракорпоральное оплодотворение (IVF) часто служит общим названием процесса получения эмбрионов вне организма, который также включает экстракорпоральное созревание (IVM) и экстракорпоральное культивирование (IVC). Эти процедуры проводят последовательно — IVM–IVF–IVC — для получения эмбрионов исключительно in vitro (IVP).

В 1959 году кролик стал первым видом млекопитающих, у которого с помощью IVF удалось получить живое потомство,¹ а в 1968 году таким видом стали лабораторные мыши.² Поскольку мышь не подходила в качестве модели для крупного рогатого скота, первый успешный опыт IVF у крупного рогатого скота был проведён в 1977 году, когда сперматозоиды подвергли капацитации в яйцеводе или матке коровы либо крольчихи,³ а первый живой телёнок родился в 1981 году после переноса 4-клеточного эмбриона в яйцевод коровы-реципиента.⁴ Первые телята, полученные полностью с помощью IVM, IVF и IVC, родились в 1987 году.⁵ С тех пор исследования методов in vitro получили значительное развитие. Кроме того, методы in vitro теперь применяются в коммерческой практике совместно с переносом эмбрионов в ряде стран. В этой главе мы намерены описать наиболее современные методы получения ооцитов, получения эмбрионов in vitro и использования таких эмбрионов в скотоводстве. Некоторые области применения технологии IVF у крупного рогатого скота перечислены в таблице 81.1.

Получение ооцитов

Первоначально, in vitroПроцедуры in vitro у крупного рогатого скота первоначально проводили главным образом в исследовательских целях, используя ооциты, полученные от самок после стимуляции суперовуляции. При сборе из преовуляторных фолликулов или яйцеводов через 20–24 часов после начала течки ооциты уже прошли созревание и готовы к IVF и IVC. Ооцитам, полученным из яичников с боен, требуется IVM, поэтому исследования с их использованием отставали до усовершенствования методов IVM. Сегодня яичники крупного рогатого скота с боен широко используются как источник ооцитов.

Получение ооцитов от живого крупного рогатого скота

Основной метод получения ооцитов от живого крупного рогатого скота — аспирация из яичников, положение которых регулируют через прямую кишку, под контролем введённых во влагалище ультразвукового датчика и иглы. До разработки этого метода ооциты получали хирургическим путём через разрез в боку⁶ или при лапароскопических вмешательствах через поясничную ямку,⁷ однако такие подходы были дорогостоящими и малоэффективными, а также создавали риск образования спаек с последующей потерей плодовитости. Внедрение трансректальной ультразвуковой визуализации в реальном времени (обзор см. в источнике 8) привело к разработке методов многократного получения ооцитов от самок крупного рогатого скота. Получение ооцитов через поясничную ямку под ультразвуковым контролем было описано в 1987 году Каллесеном и соавт.⁹ а первый эффективный метод, допускающий многократное применение и предусматривающий трансвагинальную аспирацию под ультразвуковым контролем, был разработан в 1988 году.¹⁰ Этот метод получил широкую известность как извлечение яйцеклеток (OPU), или трансвагинальная аспирация. Ультразвуковой датчик с прикреплённым к нему направителем иглы, применяемый у крупного рогатого скота, показан на рисунке 81.1. Там же приведена схема введения датчика в свод влагалища, позволяющего направить иглу через стенку влагалища в яичник.

Количество ооцитов, получаемых от коровы за один сеанс OPU, зависит от множества факторов. Из механических факторов на количество полученных неповреждённых комплексов «кумулюс — ооцит» влияют разрежение, используемое для извлечения ооцита из фолликула, диаметр иглы,¹² а также длина её скоса.¹³ Ещё один фактор — частота получения ооцитов. OPU можно проводить у одной и той же коровы один или два раза в неделю без применения экзогенных гормонов. Исследования не выявили преимуществ какого-либо интервала между процедурами по числу ооцитов, полученных за один сеанс, при сравнении интервалов в 3, 4 и 7 дней.^14–16 Конечная цель — получение эмбрионов, пригодных для переноса реципиентам; с этой точки зрения имеются данные, что интервал в 3 или 4 дней (8 ооцитов за один сеанс OPU) лучше интервала в 7 дней (5.5 ооцитов за один сеанс OPU).¹⁷